Provtagningsanvisningar i tabellform

Hoppa till: navigering, sök

Till innehĂ„llsförteckningen för Referensmetodik:Ögoninfektioner



Provtagningsanvisningar i tabellform

Konjunktivit

1. Bakteriediagnostik, allmÀn odling

  • A. utrustning
    • 1. Bomullsarmerad, kolad provtagningspinne.
    • 2. Koksaltlösning i engĂ„ngsförpackning.
    • 3. Transportsubstrat (“Stuartrör’).
  • B. Teknik
    • 1. Prov tas frĂ„n bĂ„da ögonens nedre fornix med koksaltfuktade kolade provtagningspinnar.
    • 2. Provtagningspinnarna förs ner i 2 rör med transportsubstrat och skaften bryts av innan locken skruvas pĂ„.
    • 3. Förvaras i kyla i avvaktan pĂ„ transport. Rören bör nĂ„ laboratoriet inom 24 timmar.

Specialfall: vid diagnostik av Neisseria gonorrhoeae bör rören förvaras i rumstemperatur och transporttiden mÄste vara kort (<24 timmar). Provtagningen bör kompletteras med direktmikroskopi. Ange gc-odling pÄ remissen.

Chlamydia trachomatis: för klamydiapÄvisning anvÀnds speciell provtagningspinne och speciellt transportrör. Detta prov tas före gonokockprovet eftersom kolpartiklarna frÄn den allmÀnna provtagningspinnen kan störa klamydiadiagnostiken.

II. Virusdiagnostik

  • A. Utrustning
    • 1. Virologiskt provtagningsset med bomullsarmerad provtagningspinne och rör med virustransportmedium, t ex Virocult.
  • B. Teknik
    • 1. Torr provtagningspinne rullas med ordentligt tryck mot nedre konjunktivalsĂ€cken för att fĂ„ med epitelceller.
    • 2. Pinnen förs ner i röret med virustransportmedium se till att bomullsdelen nĂ„r ner i vĂ€tskan.
    • 3. Förvaras i kyla i avvaktan pĂ„ transport. Röret bör nĂ„ laboratoriet inom 2 timmar.

Specialfall: Prov för direktpÄvisning av virus med immuofluorescensmikroskopi tas med bomullspinne. Nedre tarsala konjunktiva skrapas och materialet utstryk pÄ speciellt objektsglas med förstansade brunnar. Lufttorkas.

Keratit

1. Bakterie- och svampdiagnostik

  • A. Utrustning
    • 1 Nasofarynxpinnar
    • 2. Steril koksaltlösning
    • 3. Odlingsplattor med hĂ€matinagar, blodagar, samt odlingsbuljong (CM-buljong).
    • 4. Lokalanestesimedel utan konserveringsmedel.
    • 5. Knivblad eller “rosa” kanylspets (18g) för skrapning av kornea.
    • 6. Objektsglas, identitetsmĂ€rkt och mĂ€rkt dĂ€r provmaterialet sĂ€tts.
  • B. Teknik
    • 1. Börja med konjunktivalodling enligt ovan.
    • 2. Anestesera. TvĂ€tta och skrapa bort belĂ€ggningar frĂ„n keratithĂ€rden med koksaltdoppad nasofarynxpinne.
    • 3. Stryk ut pĂ„ övre halvan av plattor med hĂ€matinagar, blodagar, sabouraudagar i denna ordning.
    • 4. Skrapa keratithĂ€rden med knivblad eller kanyl. Inokulera nedre halvan av plattorna med flera korta stryk per platta. Flera skrap krĂ€vs om alla plattor och glas skall kunna inokuleras. SlĂ€pp slutligen ner knivbadet eller kanylen i buljongröret utan att kontaminera.
    • 5. MedsĂ€nd ev kontaktlinsvĂ€tska och kontaktlinser till laboratoriet.

II. Virusdiagnostik

  • A. Utrustning
    • 1. Virologiskt provtagningsset med provtagningspinne och rör med virustransportmedium.
    • 2. Lokalanestesimedel utan konserveringsmedel.
  • B. Teknik
    • 1. Anestesera kornea
    • 2. Prov tas med separata provtagningspinnar frĂ„n sĂ„vĂ€l keratithĂ€rden som konjunktiva
    • 3. Pinnarna förs ner i rör med transportmedium. se till att bomullsdelen nĂ„r ner i vĂ€tskan.
    • 4. Förvaras kyla i avvaktan pĂ„ transport. Röret bör nĂ„ laboratoriet inom 24 timmar.


III. Parasitdiagnostik (misstÀnkt amöbakeratit)

  • A. utrustning
    • 1 Nasofarynxpinnar
    • 2. Steril koksaltlösning
    • 3. Rör med Page’s saltlösning.
    • 4. Lokalanestesimedel utan konserveringsmedel
    • 5. Knivblad eller grov kanylspets (18g) för skrapning av kornea.
    • 6. Objektsglas, identitetsmĂ€rkt och mĂ€rkt dĂ€r provmaterialet sĂ€tts.
  • B. Teknik.
    • 1. Anestesera. TvĂ€tta och skrapa bort belĂ€ggningar frĂ„n keratithĂ€rden med koksaltdoppad nasofarynxpinne.
    • 2. Ta biopsi och/eller skrapa keratithĂ€rden med knivblad eller kanyl. För ner materialet i röret med Page’s saltlösning
    • 3. Skrapa igen. Stryk ut pĂ„ 2 förmĂ€rkta objektsglas. LĂ„t lufttorka.
    • 4. MedsĂ€nd ev kontaktlinsvĂ€tska, kontaktlinsbehĂ„llare och kontaktlinser till laboratoriet.

Endoftalmit

1. Bakterie- och svampdiagnostik

  • A. Utrustning
    • 1. Sprutor, 1 mL
    • 2. Kanyler, blĂ„ (23g) och grĂ„ (27g)
    • 3. Sterila gummiproppar
    • 4. (Ev odlingsmedier och sprittvĂ€ttade, mĂ€rkta objektsglas enligt "specialfall" nedan)
  • B. Teknik
    • 1. RetrobulbĂ€r eller peribulbĂ€r anestesi.
    • 2. FrĂ€mre kammarprov: 1 mL spruta med grĂ„ spets. Spetsen förs in via ett ev operationssnitt eller ny paracentes.
    • 3. Glaskroppsprov: 1 mL spruta med blĂ„ spets. Spetsen förs in genom pars plana 3,5 mm frĂ„n limbus.
    • 4. Sprutorna förseglas genom att kanylspetsama sticks i sterila gummiproppar. Transporteras direkt till laboratoriet.


Specialfall: om proverna inte kan nÄ laboratoriet samma dag inokuleras 1 droppe pÄ respektive odlingssubstrat och objektsglas, i turordning enligt listan nedan, sÄ lÄngt materialet rÀcker. Odlingsmedier förvaras i termostatskÄp vid 37 C i vÀntan pÄ transport.

  • 1. CM-buljong
  • 2. HĂ€matinagar
  • 3. En droppe inom förmĂ€rkt omrĂ„de pĂ„ objektsglas 1
  • 4. Blodagar
  • 5. Sabouraudagar
  • 6. En droppe inom förmĂ€rkt omrĂ„de pĂ„ objektsglas 2