PAR 08 Mikroskopisk påvisning av mikrofilarier i blod - Versionshistorik

Jadwiga Krusnell den 6 december 2012 kl. 12.53

2012-12-06T12:53:12Z

2012-09-25T13:53:11Z

2012-08-20T10:13:38Z

Knotts koncentration (ref. 5 och 6)

2012-08-20T10:10:18Z

Knotts koncentration (ref. 5 och 6)

2012-08-20T10:09:25Z

Knotts koncentration (ref. 5 och 6)

2012-08-16T10:51:25Z

2012-08-09T11:27:26Z

Svarsrutiner

2012-08-09T10:59:27Z

Membranfiltrering

2012-08-09T10:59:01Z

Analysprincip

2012-08-09T10:54:02Z

Analysprincip

← Äldre version		Versionen från 6 december 2012 kl. 12.53
Rad 100:		Rad 100:
	[[Kategori:Parasiter]]		[[Kategori:Parasiter]]
	[[Kategori:Laboratoriediagnostik]]		[[Kategori:Laboratoriediagnostik]]
		+	[[Kategori:Laboratoriediagnostik-parasiter]]

← Äldre version		Versionen från 25 september 2012 kl. 13.53
Rad 99:		Rad 99:

	[[Kategori:Parasiter]]		[[Kategori:Parasiter]]
		+	[[Kategori:Laboratoriediagnostik]]

@@ Rad 58: / Rad 58: @@
 # För över supernatanten till en kastburk med en plastpipett. Sedimentet består av vita blodkroppar och eventuella mikrofilarier.
 # Mät volymen av sedimentet med en pipett så att koncentrationen av mikrofilarier kan beräknas.
-#Pipettera sedan flera 50 µL droppar av sedimentet på varje objektglas tills sedimentet tar slut. '''OBS!''' Använd allt sediment. Låt glasen lufttorka i minst 60 minuter och fixera sedan materialet 30 sekunder i 99,8 % metanol innan Giemsa-färgning.
+#Pipettera sedan flera 50 µL droppar av sedimentet på varje objektglas tills sedimentet tar slut. '''OBS!''' Använd allt sediment. Låt glasen lufttorka i minst 60 minuter och fixera sedan materialet 30 sekunder i metanol innan Giemsa-färgning.
 # Färga preparaten 20 min med 5 % Giemsalösning i fosfatbuffert pH 7,2. För spädning av Giemsa se metodbeskrivning ([[PAR 09 Malariamikroskopi|PAR 09]]).

@@ Rad 56: / Rad 56: @@
 # Blanda 9 mL 2 % formalin med 1 mL blod i ett 10 mL-rör.
 # Centrifugera 500 x g i 10 minuter.
-# För över supernatanten till en kastburk med en plastpipett. Sedimentet består av vita blodkroppar och mikrofilarier (om de är närvarande).
+# För över supernatanten till en kastburk med en plastpipett. Sedimentet består av vita blodkroppar och eventuella mikrofilarier.
 # Mät volymen av sedimentet med en pipett så att koncentrationen av mikrofilarier kan beräknas.
 #Pipettera sedan flera 50 µL droppar av sedimentet på varje objektglas tills sedimentet tar slut. '''OBS!''' Använd allt sediment. Låt glasen lufttorka i minst 60 minuter och fixera sedan materialet 30 sekunder i 99,8 % metanol innan Giemsa-färgning.

@@ Rad 56: / Rad 56: @@
 # Blanda 9 mL 2 % formalin med 1 mL blod i ett 10 mL-rör.
 # Centrifugera 500 x g i 10 minuter.
-# För över supernatanten till slaskflaskan med en plastpipett. Sedimentet består av vita blodkroppar och mikrofilarier (om de är närvarande).
+# För över supernatanten till en kastburk med en plastpipett. Sedimentet består av vita blodkroppar och mikrofilarier (om de är närvarande).
 # Mät volymen av sedimentet med en pipett så att koncentrationen av mikrofilarier kan beräknas.
 #Pipettera sedan flera 50 µL droppar av sedimentet på varje objektglas tills sedimentet tar slut. '''OBS!''' Använd allt sediment. Låt glasen lufttorka i minst 60 minuter och fixera sedan materialet 30 sekunder i 99,8 % metanol innan Giemsa-färgning.

@@ Rad 1: / Rad 1: @@
-'''Huvudartikel''', publicerad mars 2012. '''Texten är preliminär, ännu ej beslutad genom konsensusförfarande'''.
+'''Huvudartikel''', publicerad mars 2012.
 ----
 Till innehållsförteckngen för ''[[Referensmetodik:Parasitologisk diagnostik]]''

@@ Rad 78: / Rad 78: @@
 Mikrofilarier är inte rörliga med Knotts koncentration eftersom 2 % formalin dödar dem.
 ====Svarsrutiner====
-Mikrofilarier påvisade (ange genus och art).
+Mikrofilarier påvisade (ange genus och art). Ange antal mikrofilarier och blodvolym.
 Mikrofilarier inte påvisade.

@@ Rad 30: / Rad 30: @@
 # Dra ur pistongen ur sprutan. Koppla ihop sprutan med filterhållaren. Pipettera minst 3 mL välblandat blod i sprutan. Tryck ner pistongen och spruta blodet genom filtret. Filtratet samlas upp i slaskflaskan. Lossa sprutan från filterhållaren innan pistongen dras upp.
 # Spruta igenom filtret 3 x 10 mL 0,9 % NaCl.
-# Spruta igenom 10 mL luft. '''OBS!''' Fortsätt enligt punkterna 6-13 om filtret ska fixeras och [[PAR 09 Malariamikroskopi|Giemsa-färgas]]. För att observera levande, rörliga mikrofilarier följ beskrivningen under ”Anmärkning”.
+# Spruta igenom 10 mL luft. '''OBS!''' Fortsätt enligt punkterna 6-13 om filtret ska fixeras och Giemsa-färgas. För att observera levande, rörliga mikrofilarier följ beskrivningen under ”Anmärkning”.
 # Spruta igenom 5 mL metanol.
 # Spruta igenom 5 mL luft.

@@ Rad 8: / Rad 8: @@
 '''Direktmikroskopi''': helblod undersöks direkt för levande mikrofilarier.
-'''Membranfiltrering''': helblod filtreras genom ett filter med porstorlek 3 µm. Filtret [[PAR 09 Malariamikroskopi|Giemsa-färgas]] och undersöks i ljusmikroskop. Metoden ger ökad detektionsnivån och tillåter kvantifiering av mikrofilarier. Artbestämning kan försvåras på grund av otydlig morfologi.
+'''Membranfiltrering''': helblod filtreras genom ett filter med porstorlek 3 µm. Filtret Giemsa-färgas och undersöks i ljusmikroskop. Metoden ger ökad detektionsnivån och tillåter kvantifiering av mikrofilarier. Artbestämning kan försvåras på grund av otydlig morfologi.
-'''Knotts koncentration''': helblod blandat med 2 % formalin centrifugeras och sedimentet undersöks i ljusmikroskop efter [[PAR 09 Malariamikroskopi|Giemsa-färgning]]. Röda blodkroppar hemolyseras medan vita blodkroppar och mikrofilarier koncentreras. Metoden ökar detektionsnivån av mikrofilarier i blod och tillåter artbestämning.
+'''Knotts koncentration''': helblod blandat med 2 % formalin centrifugeras och sedimentet undersöks i ljusmikroskop efter Giemsa- färgning. Röda blodkroppar hemolyseras medan vita blodkroppar och mikrofilarier koncentreras. Metoden ökar detektionsnivån av mikrofilarier i blod och tillåter artbestämning.
 ===Provmaterial===