Skillnad mellan versioner av "Bilaga 1: Realtids-PCR för påvisande av plasmidburen AmpC (ESBLM)"

Från Referensmetodik för laboratoriediagnostik
Hoppa till navigering Hoppa till sök
Rad 1: Rad 1:
 
+
''Till innehållsförteckningen [[Referensmetodik:Smittskyddslagens sjukdomar]]''
 +
----
 +
Till artikeln
 +
---- 
 
==Bilaga 1: Realtids-PCR för påvisande av plasmidburen AmpC (ESBL<SUB>M</SUB>) med LightCycler (ej referensmetodik)==
 
==Bilaga 1: Realtids-PCR för påvisande av plasmidburen AmpC (ESBL<SUB>M</SUB>) med LightCycler (ej referensmetodik)==
 
===Inledning===  
 
===Inledning===  
Rad 41: Rad 44:
 
*PCR-mix: Blanda en mix per komponent: antal rör + en NTC + en extra.  
 
*PCR-mix: Blanda en mix per komponent: antal rör + en NTC + en extra.  
  
+
[[Fil:ESBLMTabell1.jpg|thumb|600px|center|]]
        CIT        DHA            Komponent        Volym  per reaktion        Komponent        Volym  per reaktion            PCR-grade vatten        10  mL        PCR-grade vatten        10  mL            Primer CIT-F        0,5 mL            Primer DHA-F        0,5 mL                Primer CIT-R        0,5 mL            Primer DHA-R        0,5 mL                Mix SYBR green        4,0 mL        Mix SYBR green        4,0 mL            Totalt:         15 mL        Totalt        15 mL     
+
 
 
För övrigt se ”Uppspädning av primers och prober från SGS DNA” i Centuri.
 
 
   
 
   
 
Moment 3 (Provsättning och start av LightCycler):
 
Moment 3 (Provsättning och start av LightCycler):
 
   
 
   
Förberedelser: se metod ”Handhavandebeskrivning LightCycler 1.5”
+
 
 +
[[Fil:ESBLMTabell2.jpg|thumb|700px|center|]]
 +
 
 +
 
 +
 
 +
Läs av amplifierings- och smältpunkts-kurvorna
 
   
 
   
1.         Ta en transportburk ur frysen, i den transporteras PCR-mixen till rum 16. Använd LAF-bänken för sättning av templat till mix.
+
====Bedömning====
 +
*1.     Kontrollera att kontrollerna slår som förväntat; CCUG 58543 (CIT) pos i CIT-mix och CCUG 58545 (DHA) positiv i DHA-mix.
 
   
 
   
2.         Hämta kylblocket i kylen rum 19. Placera kapillärer i hållarna. Pipettera 15 µL PCR-mix i varje kapillär-rör (enligt protokoll).
+
*2.     Tm CIT bör ligga 90 +/- 1ºC,  Tm DHA bör ligga 91 +/- 1ºC.
 
   
 
   
3.         Tillsätt 5 µL templat (enligt protokoll) till kapillär-rören. Sätt lock på röret så fort templatet är pipetterat. NTC korkas utan tillsats.
+
*3.   Tm kontroll-Tm prov ska vara +/- 1,00ºC för att säkerställa specificitet av PCR-produkt.
 
   
 
   
4.          Flytta kapillärerna till karusellen och centrifugera i karusellcentrifugen.
+
 
Kontrollera nivån i kapillärerna genom att titta underifrån efter centrifugeringen, som kontroll på att det är rätt pipeterat.
+
För verifierad genotypisk ESBL<SUB>M</SUB> krävs alltså:
 
   
 
   
5.          Sätt karusellen i Lightcycler.
+
*A)      Fenotypiska karaktäristika
+
*B)      Tm +/- 1,00ºC från positiva kontrollen
6.          Välj program ESBLm och skriv in provnumren enligt protokoll.
+
 
+
Positivt utfall vid smältpunktanalys tolkas som uttryck av CIT eller DHA.
 
7.          Tryck Start Run och namnge körningen: ESBLm ÅÅMMDD/sign. Spara i experiments/ ESBLm ÅÅ. Klicka på SAVE.
 
 
PCR-program:
 
 
   
 
   
          Program        Target        Hold (mm:ss)        Ramp rate (ºC/s)        Acquisition Mode            Fast start        95º        10:00        20                      Amplification        95º        00:15        20        none                      57º        00:01        20        none          x 25                      72º        00:45        5        singel            Tm calling        95º        00:15        20        none                      60º        00:60        20        none                      95º        00:00        0,2        continuous            Cooling        40º        00:30        20        none     
+
Negativt utfall vid smältpunktsanalys tolkas som kromosomalt medierad AmpC.
Avläsning  och  bedömning
 
Läs av amplifierings- och smältpunkts-kurvorna och skriv ut bilderna. Se metod ”Handhavandebeskrivning LightCycler 1.5”
 
 
   
 
   
Bedömning:
+
==REFERENSER==
1.    Kontrollera att kontrollerna slår som förväntat; CCUG 58543 (CIT) pos i CIT-mix och CCUG 58545 (DHA) positiv i DHA-mix.
+
*1.                  Brolund A, Wisell KT, Edquist PJ, Elfstrom L, Walder M, Giske CG. Development of a real-time SYBRGreen PCR assay for rapid detection of acquired AmpC in Enterobacteriaceae. J Microbiol Methods. 2010 Sep;82(3):229-33.
+
*2.                  Perez-Perez FJ, Hanson ND. Detection of plasmid-mediated AmpC beta-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2002 Jun;40(6):2153-62.
2.    Tm CIT bör ligga 90 +/- 1ºC,  Tm DHA bör ligga 91 +/- 1ºC.
 
 
3.  Tm kontroll-Tm prov ska vara +/- 1,00ºC för att säkerställa specificitet av PCR-produkt.
 
 
För verifierad genotypisk ESBLm krävs alltså:
 
 
A)      Fenotypiska karaktäristika
 
B)      Tm +/- 1,00ºC från positiva kontrollen
 
 
Negativt utfall vid smältpunktsanalys tolkas som kromosomalt medierad ESBLm.
 
 
Positivt utfall vid smältpunktanalys tolkas som uttryck av CIT eller DHA.
 
1.                  Brolund A, Wisell KT, Edquist PJ, Elfstrom L, Walder M, Giske CG. Development of a real-time SYBRGreen PCR assay for rapid detection of acquired AmpC in Enterobacteriaceae. J Microbiol Methods. 2010 Sep;82(3):229-33.
 
2.                  Perez-Perez FJ, Hanson ND. Detection of plasmid-mediated AmpC beta-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2002 Jun;40(6):2153-62.
 
3. Prövningsrapport Klinisk Mikrobiologi. [KML  XIII:30 2011]  pAmpC (ESBLm)
 

Versionen från 29 mars 2012 kl. 17.52

Till innehållsförteckningen Referensmetodik:Smittskyddslagens sjukdomar


Till artikeln


Bilaga 1: Realtids-PCR för påvisande av plasmidburen AmpC (ESBLM) med LightCycler (ej referensmetodik)

Inledning

Den aktuella metoden är enl modifierad variant av en multiplex PCR som i orginautförande beskrevs av Perez-Perez (Ref), senare modifierad av Brolund et al (REf). Den ursprungliga metoden beskrev påvisandet av sex subgrupper (CIT, MOX, FOX, DHA, ACC och EBC) av plasmidmedierad AmpC (pAmpC, ESBLM), men eftersom hittills två subgrupper (CIT och enstaka DHA) dominerar i Sverige, beskrivs nedan metod för påvisande av dessa. Metod för påvisande av övriga subgrupper kan erhållas från Smittskyddsinstitutet.

PCR-metoden

  • Provmaterial: Utväxta kolonier av bakterier tillhörande Enterobacteriaceae med fenotypisk misstanke om ESBLM kan användas som utgångsmaterial.
  • Instrument: LightCycler 2.1 Roche
  • Reagens: LightCycler Fast start DNA MasterPLUS SYBR Green 1 och H2O PCR-grade (båda Roche Diagnostics Scandinavia AB).
  • Primerpar:
    • CIT: amplimer har storleken 462 bp
    • DHA: amplimer har storleken 218 bp
  • Primers 10 μM:
    • CIT-F 5'-TGG CCA GAA CTG ACA GGC AAA-3'
    • CIT-R 5’-TTT CTC CTG AAC GTG GCT GGC-3’
    • DHA-F 5’-AAC TTT CAC AGG TGT GCT GGG T-3’
    • DHA-R 5’-GCT GCC ACT GCT GAT AGA A-3’
  • Referensstammar:
    • E. coli CCUG 58543 (CIT)
    • Klebsiella pneumoniae CCUG 58545 (DHA)

Metod-kontroll

Vid varje analystillfälle testas förutom patientprov även (positiva kontroller) kontrollstammar CCUG 58543 (CIT), CCUG 58545 (DHA) och (negativa kontroller) som blankprov H2O PCR-grade (PCR-rent vatten samt NTC (PCR-mix utan templat).

Utförande

Moment 1 (DNA-preparation):

  • Märk upp sterila Eppendorfrör 1,5 mL. Ett rör för varje misstänkt isolat, ett för var kontrollstam och ett för vatten. Tillsätt 100 mL H2O PCR-grade till varje rör.
  • Lös upp 1 CFU i röret. Inkubera proven, 98ºC, 15 minuter i värmeblock.
  • Centrifugera 13 000 rpm i 5 minuter. Supernatanten används som templat.


Moment 2 (Tillverkning av PCR-mix):

  • Master Mix SYBR green 1: Beredning enligt gängse metod.
  • PCR-mix: Blanda en mix per komponent: antal rör + en NTC + en extra.
ESBLMTabell1.jpg


Moment 3 (Provsättning och start av LightCycler):


ESBLMTabell2.jpg


Läs av amplifierings- och smältpunkts-kurvorna

Bedömning

  • 1. Kontrollera att kontrollerna slår som förväntat; CCUG 58543 (CIT) pos i CIT-mix och CCUG 58545 (DHA) positiv i DHA-mix.
  • 2. Tm CIT bör ligga 90 +/- 1ºC, Tm DHA bör ligga 91 +/- 1ºC.
  • 3. Tm kontroll-Tm prov ska vara +/- 1,00ºC för att säkerställa specificitet av PCR-produkt.


För verifierad genotypisk ESBLM krävs alltså:

  • A) Fenotypiska karaktäristika
  • B) Tm +/- 1,00ºC från positiva kontrollen

Positivt utfall vid smältpunktanalys tolkas som uttryck av CIT eller DHA.

Negativt utfall vid smältpunktsanalys tolkas som kromosomalt medierad AmpC.

REFERENSER

  • 1. Brolund A, Wisell KT, Edquist PJ, Elfstrom L, Walder M, Giske CG. Development of a real-time SYBRGreen PCR assay for rapid detection of acquired AmpC in Enterobacteriaceae. J Microbiol Methods. 2010 Sep;82(3):229-33.
  • 2. Perez-Perez FJ, Hanson ND. Detection of plasmid-mediated AmpC beta-lactamase genes in clinical isolates by using multiplex PCR. J Clin Microbiol. 2002 Jun;40(6):2153-62.