Skillnad mellan versioner av "Provsättning"

Från Referensmetodik för laboratoriediagnostik
Hoppa till navigering Hoppa till sök
 
(11 mellanliggande sidversioner av samma användare visas inte)
Rad 2: Rad 2:
  
 
----
 
----
'''EJ redigerad'''
+
 
 +
== Ankomstkontroll på laboratoriet ==
 +
 
 +
*Kontrollera;
 +
**att provkärlens/objektglasens märkning och antal överensstämmer med remiss.
 +
**att beställare finns angivet.
 +
**att rekommenderat provmaterial tagits till undersökningen.
 +
**att rekommenderad transporttid ej överskridits.
 +
 
 +
Avvikelser från ovanstående bör föranleda diskussion med beställaren. Om behandlande läkare anser nytt prov inte kan tas och att analysen ska utföras och rapporteras trots felaktigheter på det inkommande provet, ska felkällorna kommenteras i laboratorierapporten.
 +
 
  
 
== Provsättning ==
 
== Provsättning ==
Rad 13: Rad 23:
 
'''1. Aerob odling'''
 
'''1. Aerob odling'''
  
Alla typer av prov, definierade i tabell 6, odlas primärt på blodagar, hematinagar och CLED-agar. I förekommande fall sätts prov också till anrikningsbuljong, FAB. Prov som anländer till laboratoriet i blododlingsflaskor, inkuberas upp till 10 dygn och sekundärsprids närhelst indikation till växt föreligger. Sådana prov som utgörs av fast vävnad etc., vilka överförs till anrikningsbuljong, sekun¬därsprids på agarplattor av samma sort. Buljongen inkuberas totalt 10 dygn.
+
Alla typer av prov, definierade i tabell 6, odlas primärt på blodagar, hematinagar och CLED-agar. I förekommande fall sätts prov också till anrikningsbuljong, FAB. Prov som anländer till laboratoriet i blododlingsflaskor, inkuberas upp till 10 dygn och sekundärsprids närhelst indikation till växt föreligger. Sådana prov som utgörs av fast vävnad etc., vilka överförs till anrikningsbuljong, sekundärsprids på agarplattor av samma sort. Buljongen inkuberas totalt 10 dygn.
'''
 
2. Anaerob odling, rutinnivå'''
 
  
Metoden avser miniminivå för anaerob odling som i förekommande fall kompletterar aerob odling, se också tabell 6, fotnot 4. Prov inokuleras på anaeroba blodplattor, FAA (se nedan), som görs semiselektiva genom applikation av aminoglykosid- och metronidazollappar i primärstryket (se tabell 6, fotnot 5). Inokulera även anaerob buljong (FAB) som inkuberas aerobt eller anaerobt.
+
'''2. Anaerob odling, rutinnivå'''
 +
 
 +
Metoden avser miniminivå för anaerob odling som i förekommande fall kompletterar aerob odling, se också tabell 6, fotnot 4. Prov inokuleras på anaeroba blodplattor, FAA (se nedan), som görs '''semiselektiva''' genom applikation av aminoglykosid- och metronidazollappar i primärstryket (se tabell 6, fotnot 5). Inokulera även anaerob buljong (FAB) som inkuberas aerobt eller anaerobt.
 
   
 
   
De anaeroba blodplattorna bör vara prereducerade eller färska. Inokulering sker i anaerobbox (referensmetod), men aerob provsättning med sekundär inkubering i klocka med gasgenererande kuvert som t.ex. Anaerogen (OXOID) eller i klocka med evakueringssystem är accepterad alternativ metodik. Med kuvert erhålls god anaerobios tillräcklig för flertalet kliniskt relevanta anaeroba bakterier. Med resazurin som indikator garanteras redoxförhållanden ≤ 110 mV. Avläs dag 2 eller efter medicinsk bedömning. Observera att anaerobt inkuberade plattor inte bör exponeras för luft under de första 48 timmarna. Vissa långsamväxande arter, hit hör peptostreptokocker och svartpigmenterade gramnegativa stavar som Porphyromonas, Prevotella, och Bilophila kan behöva inkuberas ytterligare en eller flera dagar för detekterbara kolonier. Andra anaeroba bakterier, t.ex. Actinomyces kan behöva 7-10 dagars inkubationstid. FAB granskas för växt dagligen upp till 10 dygn.
+
De anaeroba blodplattorna bör vara prereducerade eller färska. Inokulering sker i anaerobbox (referensmetod), men aerob provsättning med sekundär inkubering i klocka med gasgenererande kuvert som t.ex. Anaerogen (OXOID) eller i klocka med evakueringssystem är accepterad alternativ metodik. Med kuvert erhålls god anaerobios tillräcklig för flertalet kliniskt relevanta anaeroba bakterier. Med resazurin som indikator garanteras redoxförhållanden ≤ 110 mV. Avläs dag 2 eller efter medicinsk bedömning. Observera att anaerobt inkuberade plattor inte bör exponeras för luft under de första 48 timmarna. Vissa långsamväxande arter, hit hör peptostreptokocker och svartpigmenterade gramnegativa stavar som ''Porphyromonas, Prevotella'', och ''Bilophila'' kan behöva inkuberas ytterligare en eller flera dagar för detekterbara kolonier. Andra anaeroba bakterier, t.ex. ''Actinomyces'' kan behöva 7-10 dagars inkubationstid. FAB granskas för växt dagligen upp till 10 dygn.
 +
 
 
Den förenklade anaeroba odlingen är med beskrivna förbehåll fullt acceptabel i rutindiagnostiken. Det enskilda laboratoriet definierar utifrån denna miniminivå eventuell modifiering av anaerobdiagnostiken, innefattande förlängd inkuberings¬tid, bruk av selektiva medier (se nedan), särskilt i de fall anaerob odling speciellt begärts.
 
Den förenklade anaeroba odlingen är med beskrivna förbehåll fullt acceptabel i rutindiagnostiken. Det enskilda laboratoriet definierar utifrån denna miniminivå eventuell modifiering av anaerobdiagnostiken, innefattande förlängd inkuberings¬tid, bruk av selektiva medier (se nedan), särskilt i de fall anaerob odling speciellt begärts.
  
 
'''3. Anaerob odling, jämförelsenivå'''  
 
'''3. Anaerob odling, jämförelsenivå'''  
  
Metoden bör användas vid studier men kan även användas i rutinen efter särskild medicinsk bedömning. Prov inokuleras på prereducerade eller färska anaeroba blodagarplattor, d.v.s. FAA, samt två typer av selektiva FAA; kana-vanko-agar och neomycinagar (enligt bilaga 1). Inokulera även anaerob buljong (FAB) i före¬kommande fall och inkubera denna anaerobt.
+
Metoden bör användas vid studier men kan även användas i rutinen efter särskild medicinsk bedömning. Prov inokuleras på prereducerade eller färska anaeroba blodagarplattor, d.v.s. FAA, samt två typer av selektiva FAA; kana-vanko-agar och neomycinagar (enligt bilaga 1). Inokulera även anaerob buljong (FAB) i förekommande fall och inkubera denna anaerobt.
För anaerob miljö används anaerobbox i vilken all hantering av provet sker (miljö 10 % H2, 5-10% CO2, 80-85 % N2. Alternativ är inkubering i någon typ av klocka (se under punkt 2).
+
För anaerob miljö används anaerobbox i vilken all hantering av provet sker (miljö 10 % H2, 5-10% CO<SUB>2</SUB>, 80-85 % N2. Alternativ är inkubering i någon typ av klocka (se under punkt 2).
 +
 
Inkubera anaeroba plattor och eventuell buljong 10 dygn. Daglig avläsning.
 
Inkubera anaeroba plattor och eventuell buljong 10 dygn. Daglig avläsning.
  
 
=== Speciell odling, referensmetodik ===
 
=== Speciell odling, referensmetodik ===
 
   
 
   
 +
=== Tabell 6 ===
 +
[[Fil:Hudochmjuktabell6.jpg]]
 +
[[Fil:Hudochmjuktabell6b.jpg]]
  
 +
=== Tabell 7.  ===
 
Val av medier, atmosfär, temperatur och inkubationstid beskrivs i tabell 7.
 
Val av medier, atmosfär, temperatur och inkubationstid beskrivs i tabell 7.
 +
[[Fil:Hudochmjuktabell7a.jpg]]
  
+
== Inokulering av medier ==
  
=== Tabell 6. Allmän aerob och anaerob odling, referensmetodik ===
 
  
  
Inkubationsatmosfär (35-37 C), tid (dygn)
+
=== Allmänt ===
Ae/A
 
Blod-
 
odl.-
 
flaska Blod-
 
agar4
 
  
Luft Hematin-
+
Inokulera alltid medier i en bestämd ordning med det minst selektiva mediet först. Provmaterialet kan kastas en vecka efter att provet primärodlats, eller efter medicinsk bedömning. Lämpliga metoder för provapplikation på agarplattor beskrivs i figur 7 och 8. Märk först agarplattorna med Labnr och inokuleringsdatum. Primärstryk i förekommande fall med provtagningspinne (fig 7) eller applicera ca 100 mikroL material på plattan (fig 8).
agar4
 
  
CO2 CLED-
 
agar4
 
  
Luft Anaerob
+
[[Fil:Hudochmjukfigur7.jpg]] 
Blod-
 
agar 4, 5, 6
 
Anaerobt FAB
 
  
 +
Gör först ett rakt primärstryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Rotera pinnen under hela stryket. Återställ provtagningspinnen i transportröret. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.
  
Ae/An
 
Sekret från öppen provlokal; sår1, fistel 2 2 2 2/10
 
Sekret från sluten provlokal med förvän¬tad polymikrobiell floratyp;+ abscess, cellulit,  pilonidalcysta, ”pus i buk”, galla, peritonealvätska, pleuravätska 2 2 2 2/10 10
 
Normalt sterila kroppsvätskor med förväntad monomikrobiell floratyp; amnionvätska , ascites, ledvätska , perikard¬vätska, synovialvätska, (bursa)
 
Subkultivering vid växt i blodod¬lingsflaskor 10
 
2 2 2 2/10
 
Fast vävnad, biopsi, ej kroppseget material (kärlkatetrar, skruvar, implantat) med förväntad monomikrobiell floratyp;
 
Vävnad, biopsi samt ej kroppseget material.
 
Subkultivering av FA-buljong 10
 
2 2 2 2/10
 
Fast vävnad, obduktionsmaterial, ej kroppseget material (dränage) med förväntad polymikrobiell floratyp. 2 2 2 2/10 10
 
Ej kroppseget material med förväntad polymikrobiell floratyp;
 
Spiral 2 2 2 2/10 10
 
CAPD-vätska 2 2 2 2/10 10
 
Sekret, vulva, vagina2 2 2 2
 
Sekret cervix3 2 2 2 2/10
 
Fotnot till Tabell 6:
 
1. Anrikning i buljong av pinnprov anses ej indicerat.
 
2. Sexuellt överförbara sjukdomar, se referensmetodik I 6. Prediktivitet kan inte anges för patogenicitet för prov från nedre genitalia förutom vissa specifika fråge¬ställningar (t.ex. Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis) samt för prov från prepubertala flickor  med avseende på vanliga övre luftvägspatogener (t.ex. Haemophilus influenzae, S. pyogenes). Odling på prov från vagina kan vara indicerat hos prepubertala flickor samt vid svampfrågeställning. Se även speciell odling, GBS-odling.
 
3. Cervixodling kan spegla etiologier vid PID men har låg specificitet, se avsnitt infektioner i inre genitalia. Med tanke på normalflorans sammansättning och dominansen av anaerober vid rubbad normalflora torde även negativa svar av typen ”Ordinär flora” kräva anaerob odling.
 
4. Vid följande kliniska remissuppgifter är det acceptabelt att enbart inkubera i luft samt CO2-miljö: Follikulit, Furunklar/karbunklar, Impetigo, Bullös impetigo, Ritters sjukdom (SSSS), Ektyma, Erysipelas, Erysipeloid, Puerperal mastit, Dak¬rocystit, Toxic shock syndrome (TSS), Infektioner i penis, Prostatit, Epididymit, Bakteriell orkit, Vagina, Venösa bensår, Brännskador, Okänd/Ingen diagnos. Övriga kliniska diagnoser inkuberas enligt ovan.
 
5. Lägg gentamicin (30 μg) - och metronidazol (10 μg) - lappar i primärstryket. Anaeroba bakterier växer oftast in i gentamicinzonen men ej i metronidazolzonen.
 
6. Selektiva anaeroba odlingsmedia inkuberas 10 dygn.
 
  
  
 +
[[Fil:Hudochmjukfigur8.jpg]]
  
 +
Primärstryk agarplattorna med plastinös enligt 1. Stryk först ett rakt stryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.
 +
  
=== Tabell 7. Speciell odling, referensmetodik ===
+
=== Inokulering av flytande medier ===
  
 +
Märk buljongrör med Labnr och inokuleringsdatum.
  
Inkubationsatmosfär (35-37 C), tid (dygn)
+
Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och inokulera mediet.
Fårblod-
 
agar
 
CO2 GBS-
 
buljong
 
CO2 MSA
 
  
Luft VRE-
 
buljong
 
Luft CLED-agar
 
Luft
 
GBS 2 1
 
Multiresistenta bakterier (MRSA, VRE, multiresistenta gramnegativa stavar) 2 1 1
 
Actinomyces spp, Bartonella spp, Borrelia spp, Clostridium tetani, Corynebacterium diphtheriae, Leptospira spp, No¬cardia spp, Streptobacillus moniliformis, Bacillus anthra¬cis, Brucella spp, Burkholderia  mallei och pseudomallei, Francisella tularensis, Rickettsia spp, Yersinia pestis Se Agens associerade med specifika sjukdomstillstånd respektive Klass 3 organismer
 
  
+
=== Direktmikroskopi ===
== Inokulering av medier ==
 
  
 +
Märk objektglas med Labnr.
  
 +
Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och stryk på objektglaset.
  
=== Allmänt ===
 
  
Inokulera alltid medier i en bestämd ordning med det minst selektiva mediet först. Provmaterialet kan kastas en vecka efter att provet primärodlats, eller efter medicinsk bedömning. Lämpliga metoder för provapplikation på agarplattor beskrivs i figur 7 och 8. Märk först agar¬plattorna med Labnr och inokuleringsdatum. Primärstryk i förekommande fall med provtagningspinne (fig 7) eller applicera ca 100 L material på plattan (fig 8).
+
== Provmaterialrelaterad beskrivning ==
  
  
 
+
=== Allmän odling ===
'''Figur 7.''' Inokulering av agarplattor med provtagningspinne.
 
Gör först ett rakt primärstryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Rotera pinnen under hela stryket. Återställ provtagningspinnen i transportröret. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.
 
  
+
'''Sekret pinnprov i transportrör'''
'''Figur 8'''. Inokulering av agarplattor med flytande material. Primärstryk agarplattorna med plastinös enligt 1. Stryk först ett rakt stryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.
 
 
  
 +
* Öppna transportröret och ta ut provtagningspinnen.
 +
*Inokulera och inkubera medier.
  
=== Inokulering av flytande medier ===
+
'''Sekret i anaerob transportflaska eller sterilt rör/kärl'''
 +
* Homogenisera innehållet genom att vortexa eller vända det förslutna röret några gånger.
 +
*Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
 +
*Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
  
Märk buljongrör med Labnr och inokuleringsdatum.
+
'''Vävnad i sterilt rör/kärl'''
Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och inokulera mediet.
+
* Öppna röret och ta material.
 +
*Placera materialet i steril mortel.
 +
*Homogenisera materialet i steril mortel. Tillsätt lite FA-buljong om provet är torrt.
 +
*Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
 +
'''Vävnad i FA-buljong med tecken på växt vid ankomst'''
 +
* Vortexa eller vänd det förslutna röret några gånger.
 +
*Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
 +
*Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
 +
'''Vävnad i FA-buljong utan tecken på växt vid ankomst'''
 +
* Inkubera röret.
 +
*Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.
  
 +
'''Ej kroppseget material i FA-buljong'''
 +
* Inkubera i 10 dygn i 35 °C - 37 °C.
 +
*Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.
 +
'''Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad monomikrobiell floratyp'''
 +
* Öppna röret och placera materialet i FA-buljong.
 +
*Inkubera i 10 dygn i 35 °C - 37 °C.
 +
*Vid växt ta material från buljongröret. Inokulera och inkubera medier.
  
=== Direktmikroskopi ===
+
'''Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad polymikrobiell flora¬typ (spiral, dränage)'''
 +
* Placera under anaeroba och sterila betingelser.
 +
** spiralen i steril petriskål och tillsätt FA-buljong. Skaka försiktigt.
 +
** alternativt i FA-buljongrör och vortexa.
 +
*Inokulera medier med hjälp av plastpasteurpipett. Gör anaerob odling först.
 +
'''Blododlingsflaskor med tecken på växt vid ankomst'''
 +
* Odla ut vid ankomsten.
 +
*Inokulera och inkubera medier.
 +
*Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.
 +
*Inkubera flaskorna ett dygn i 36 °C innan eventuell ny utodling (eller tills blod¬odlingssystemet signalerar).
 +
*Om det växer rikligt på direktutodlade medier behöver provet inte odlas ut igen.
 +
'''Blododlingsflaskor utan tecken på växt vid ankomst'''
 +
* Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.
 +
Inkubera flaskorna i 36 °C och avläs i fem dygn (eller tills blododlingssystemet signalerar) innan eventuell utodling.
 +
Inokulera och inkubera medier.
  
Märk objektglas med Labnr.
+
'''CAPD (PD), dialysvätska'''
Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och stryk ob¬jektglaset.
+
* Desinficera dialyspåsen.
 +
*Aspirera 100 mL dialysvätska och sätt till 2st 50 mL centrifugrör.
 +
*Centrifugera båda rören i 2000 x g, 10 min.
 +
*Sug av ovanvätskan med steril engångspipett av plast. Kasta ovanvätskan. Om endast liten mängd sediment, lämna kvar totalt ca 2 mL i röret för utodling.
 +
*Inokulera från sedimentet: 0,1 mL/agarplatta samt 0,5 mL till anrikningsbuljong.
 +
*Lägg ev. material ett märkt objektsglas för direktmikroskopi.
 +
*Om blododlingsflaskor eventuellt använts, åtgärdas de enligt ovan.
  
Provmaterialrelaterad beskrivning
 
Allmän odling
 
Sekret pinnprov i transportrör
 
Öppna transportröret och ta ut provtagningspinnen.
 
Inokulera och inkubera medier.
 
Sekret i anaerob transportflaska eller sterilt rör/kärl
 
Homogenisera innehållet genom att vortexa eller vända det förslutna röret några gånger.
 
Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
 
Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
 
Vävnad i sterilt rör/kärl
 
Öppna röret och ta material.
 
Placera materialet i steril mortel.
 
Homogenisera materialet i steril mortel. Tillsätt lite FA-buljong om provet är torrt.
 
Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
 
Vävnad i FA-buljong med tecken på växt vid ankomst
 
Vortexa eller vänd det förslutna röret några gånger.
 
Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
 
Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.
 
Vävnad i FA-buljong utan tecken på växt vid ankomst
 
Inkubera röret.
 
Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.
 
  
Ej kroppseget material i FA-buljong
+
=== Speciell odling ===
Inkubera i 10 dygn i 35  - 37 C.
 
Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.
 
Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad monomikrobiell floratyp
 
Öppna röret och placera materialet i FA-buljong.
 
Inkubera i 10 dygn i 35  - 37 C.
 
Vid växt ta material från buljongröret. Inokulera och inkubera medier.
 
  
Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad polymikrobiell flora¬typ (spiral, dränage)
+
'''GBS-odling'''
Placera under anaeroba och sterila betingelser.
+
*Inokulera provtagningspinnarna från vagina respektive rektum tillsammans i anrikningsbuljong för grupp B streptokocker, ”GBS-buljong”.
• spiralen i steril petriskål och tillsätt FA-buljong. Skaka försiktigt.
+
*Inkubera buljongen i 1 dygn 35 o-37 °C.
• alternativt i FA-buljongrör och vortexa.
+
*Inokulera en fårblodagarplatta med den inkuberade buljongen.  
Inokulera medier med hjälp av plastpasteurpipett. Gör anaerob odling först.
+
*Inkubera plattan i 35 °C -37 °C . Avläs efter 1 dygn. Om ingen växt av GBS, reinkubera agarplattan 1 dygn .
Blododlingsflaskor med tecken på växt vid ankomst
 
Odla ut vid ankomsten.
 
Inokulera och inkubera medier.
 
Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.
 
Inkubera flaskorna ett dygn i 36 °C innan eventuell ny utodling (eller tills blod¬odlingssystemet signalerar).
 
Om det växer rikligt på direktutodlade medier behöver provet inte odlas ut igen.
 
Blododlingsflaskor utan tecken på växt vid ankomst
 
Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.
 
Inkubera flaskorna i 36 °C och avläs i fem dygn (eller tills blododlingssystemet signalerar) innan eventuell utodling.
 
Inokulera och inkubera medier.
 
CAPD (PD), dialysvätska
 
Desinficera dialyspåsen.
 
Aspirera 100 mL dialysvätska och sätt till 2st 50 mL centrifugrör.
 
Centrifugera båda rören i 2000 x g, 10 min.
 
Sug av ovanvätskan med steril engångspipett av plast. Kasta ovanvätskan. Om endast liten mängd sediment, lämna kvar totalt ca 2 mL i röret för utodling.
 
Inokulera från sedimentet: 0,1 mL/agarplatta samt 0,5 mL till anrikningsbuljong.
 
Lägg ev. material på ett märkt objektsglas för direktmikroskopi.
 
Om blododlingsflaskor eventuellt använts, åtgärdas de enligt ovan.
 
Speciell odling
 
GBS-odling
 
Inokulera provtagningspinnarna från vagina respektive rektum tillsammans i anrikningsbuljong för grupp B streptokocker, ”GBS-buljong”.
 
Inkubera buljongen i 1 dygn 35 -37 C.
 
Inokulera en fårblodagarplatta med den inkuberade buljongen.  
 
Inkubera plattan i 35 -37 C. Avläs efter 1 dygn. Om ingen växt av GBS, reinkubera agarplattan 1 dygn .
 
  
 
   
 
   
[[Kategori:LAboratoriediagnostik:Hud och mjukdelar]]
+
[[Kategori:Laboratoriediagnostik-Infektioner i hud och mjukdelar]]
 
[[Kategori:Infektioner i hud, mjukdelar, skelett och inre organ]]
 
[[Kategori:Infektioner i hud, mjukdelar, skelett och inre organ]]

Nuvarande version från 13 december 2009 kl. 15.49

Till innehållsförteckngen för Referensmetodik: Bakteriologisk diagnostik av infektioner i hud, mjukdelar, skelett och inre organ


Ankomstkontroll på laboratoriet[redigera]

  • Kontrollera;
    • att provkärlens/objektglasens märkning och antal överensstämmer med remiss.
    • att beställare finns angivet.
    • att rekommenderat provmaterial tagits till undersökningen.
    • att rekommenderad transporttid ej överskridits.

Avvikelser från ovanstående bör föranleda diskussion med beställaren. Om behandlande läkare anser nytt prov inte kan tas och att analysen ska utföras och rapporteras trots felaktigheter på det inkommande provet, ska felkällorna kommenteras i laboratorierapporten.


Provsättning[redigera]

Allmän odling, referensmetodik[redigera]

1. Aerob odling

Alla typer av prov, definierade i tabell 6, odlas primärt på blodagar, hematinagar och CLED-agar. I förekommande fall sätts prov också till anrikningsbuljong, FAB. Prov som anländer till laboratoriet i blododlingsflaskor, inkuberas upp till 10 dygn och sekundärsprids närhelst indikation till växt föreligger. Sådana prov som utgörs av fast vävnad etc., vilka överförs till anrikningsbuljong, sekundärsprids på agarplattor av samma sort. Buljongen inkuberas totalt 10 dygn.

2. Anaerob odling, rutinnivå

Metoden avser miniminivå för anaerob odling som i förekommande fall kompletterar aerob odling, se också tabell 6, fotnot 4. Prov inokuleras på anaeroba blodplattor, FAA (se nedan), som görs semiselektiva genom applikation av aminoglykosid- och metronidazollappar i primärstryket (se tabell 6, fotnot 5). Inokulera även anaerob buljong (FAB) som inkuberas aerobt eller anaerobt.

De anaeroba blodplattorna bör vara prereducerade eller färska. Inokulering sker i anaerobbox (referensmetod), men aerob provsättning med sekundär inkubering i klocka med gasgenererande kuvert som t.ex. Anaerogen (OXOID) eller i klocka med evakueringssystem är accepterad alternativ metodik. Med kuvert erhålls god anaerobios tillräcklig för flertalet kliniskt relevanta anaeroba bakterier. Med resazurin som indikator garanteras redoxförhållanden ≤ 110 mV. Avläs dag 2 eller efter medicinsk bedömning. Observera att anaerobt inkuberade plattor inte bör exponeras för luft under de första 48 timmarna. Vissa långsamväxande arter, hit hör peptostreptokocker och svartpigmenterade gramnegativa stavar som Porphyromonas, Prevotella, och Bilophila kan behöva inkuberas ytterligare en eller flera dagar för detekterbara kolonier. Andra anaeroba bakterier, t.ex. Actinomyces kan behöva 7-10 dagars inkubationstid. FAB granskas för växt dagligen upp till 10 dygn.

Den förenklade anaeroba odlingen är med beskrivna förbehåll fullt acceptabel i rutindiagnostiken. Det enskilda laboratoriet definierar utifrån denna miniminivå eventuell modifiering av anaerobdiagnostiken, innefattande förlängd inkuberings¬tid, bruk av selektiva medier (se nedan), särskilt i de fall anaerob odling speciellt begärts.

3. Anaerob odling, jämförelsenivå

Metoden bör användas vid studier men kan även användas i rutinen efter särskild medicinsk bedömning. Prov inokuleras på prereducerade eller färska anaeroba blodagarplattor, d.v.s. FAA, samt två typer av selektiva FAA; kana-vanko-agar och neomycinagar (enligt bilaga 1). Inokulera även anaerob buljong (FAB) i förekommande fall och inkubera denna anaerobt. För anaerob miljö används anaerobbox i vilken all hantering av provet sker (miljö 10 % H2, 5-10% CO2, 80-85 % N2. Alternativ är inkubering i någon typ av klocka (se under punkt 2).

Inkubera anaeroba plattor och eventuell buljong 10 dygn. Daglig avläsning.

Speciell odling, referensmetodik[redigera]

Tabell 6[redigera]

Hudochmjuktabell6.jpg Hudochmjuktabell6b.jpg

Tabell 7.[redigera]

Val av medier, atmosfär, temperatur och inkubationstid beskrivs i tabell 7. Hudochmjuktabell7a.jpg

Inokulering av medier[redigera]

Allmänt[redigera]

Inokulera alltid medier i en bestämd ordning med det minst selektiva mediet först. Provmaterialet kan kastas en vecka efter att provet primärodlats, eller efter medicinsk bedömning. Lämpliga metoder för provapplikation på agarplattor beskrivs i figur 7 och 8. Märk först agarplattorna med Labnr och inokuleringsdatum. Primärstryk i förekommande fall med provtagningspinne (fig 7) eller applicera ca 100 mikroL material på plattan (fig 8).


Hudochmjukfigur7.jpg

Gör först ett rakt primärstryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Rotera pinnen under hela stryket. Återställ provtagningspinnen i transportröret. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.


Hudochmjukfigur8.jpg

Primärstryk agarplattorna med plastinös enligt 1. Stryk först ett rakt stryk. Stryk sedan vinkelrätt mot detta första stryk. Sekundärstryk med plastinös enligt 2 och 3.


Inokulering av flytande medier[redigera]

Märk buljongrör med Labnr och inokuleringsdatum.

Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och inokulera mediet.


Direktmikroskopi[redigera]

Märk objektglas med Labnr.

Ta provmaterial med engångs plastpipett/sterila instrument och stryk på objektglaset.


Provmaterialrelaterad beskrivning[redigera]

Allmän odling[redigera]

Sekret pinnprov i transportrör

  • Öppna transportröret och ta ut provtagningspinnen.
  • Inokulera och inkubera medier.

Sekret i anaerob transportflaska eller sterilt rör/kärl

  • Homogenisera innehållet genom att vortexa eller vända det förslutna röret några gånger.
  • Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
  • Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.

Vävnad i sterilt rör/kärl

  • Öppna röret och ta material.
  • Placera materialet i steril mortel.
  • Homogenisera materialet i steril mortel. Tillsätt lite FA-buljong om provet är torrt.
  • Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.

Vävnad i FA-buljong med tecken på växt vid ankomst

  • Vortexa eller vänd det förslutna röret några gånger.
  • Öppna röret och ta material med engångs plastpipett. Förslut röret.
  • Inokulera och inkubera medier. Gör anaerob odling först.

Vävnad i FA-buljong utan tecken på växt vid ankomst

  • Inkubera röret.
  • Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.

Ej kroppseget material i FA-buljong

  • Inkubera i 10 dygn i 35 °C - 37 °C.
  • Inokulera och inkubera medier vid tecken på växt. Vid tveksamhet om växt är det lämpligt att gramfärga buljongen samt subkultivera till agarplattor.

Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad monomikrobiell floratyp

  • Öppna röret och placera materialet i FA-buljong.
  • Inkubera i 10 dygn i 35 °C - 37 °C.
  • Vid växt ta material från buljongröret. Inokulera och inkubera medier.

Ej kroppseget material i sterilt rör/kärl med förväntad polymikrobiell flora¬typ (spiral, dränage)

  • Placera under anaeroba och sterila betingelser.
    • spiralen i steril petriskål och tillsätt FA-buljong. Skaka försiktigt.
    • alternativt i FA-buljongrör och vortexa.
  • Inokulera medier med hjälp av plastpasteurpipett. Gör anaerob odling först.

Blododlingsflaskor med tecken på växt vid ankomst

  • Odla ut vid ankomsten.
  • Inokulera och inkubera medier.
  • Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.
  • Inkubera flaskorna ett dygn i 36 °C innan eventuell ny utodling (eller tills blod¬odlingssystemet signalerar).
  • Om det växer rikligt på direktutodlade medier behöver provet inte odlas ut igen.

Blododlingsflaskor utan tecken på växt vid ankomst

  • Tillsätt näringssubstrat enligt tillverkarens anvisningar.

Inkubera flaskorna i 36 °C och avläs i fem dygn (eller tills blododlingssystemet signalerar) innan eventuell utodling. Inokulera och inkubera medier.

CAPD (PD), dialysvätska

  • Desinficera dialyspåsen.
  • Aspirera 100 mL dialysvätska och sätt till 2st 50 mL centrifugrör.
  • Centrifugera båda rören i 2000 x g, 10 min.
  • Sug av ovanvätskan med steril engångspipett av plast. Kasta ovanvätskan. Om endast liten mängd sediment, lämna kvar totalt ca 2 mL i röret för utodling.
  • Inokulera från sedimentet: 0,1 mL/agarplatta samt 0,5 mL till anrikningsbuljong.
  • Lägg ev. material på ett märkt objektsglas för direktmikroskopi.
  • Om blododlingsflaskor eventuellt använts, åtgärdas de enligt ovan.


Speciell odling[redigera]

GBS-odling

  • Inokulera provtagningspinnarna från vagina respektive rektum tillsammans i anrikningsbuljong för grupp B streptokocker, ”GBS-buljong”.
  • Inkubera buljongen i 1 dygn 35 o-37 °C.
  • Inokulera en fårblodagarplatta med den inkuberade buljongen.
  • Inkubera plattan i 35 °C -37 °C . Avläs efter 1 dygn. Om ingen växt av GBS, reinkubera agarplattan 1 dygn .