Skillnad mellan versioner av "Nukleinsyrabaserad metod för påvisning av Herpes simplexvirus-bilaga8"
(Skapade sidan med '''Huvudartikel:Genital herpes simplex-infektion'' ''Sekundärartikel:Genital herpes simplex-laboratoriediagnostik'' ---- Kvantitativ PCR för HSV-1 och HSV-2 vid Smitt...') |
|||
(8 mellanliggande sidversioner av 2 användare visas inte) | |||
Rad 1: | Rad 1: | ||
+ | '''Artikel publicerad år 2009''' | ||
+ | ----- | ||
''Huvudartikel:[[Genital herpes simplex-infektion]]'' | ''Huvudartikel:[[Genital herpes simplex-infektion]]'' | ||
− | ''Sekundärartikel:[[Genital herpes simplex-laboratoriediagnostik]]'' | + | ''Sekundärartikel till:[[Genital herpes simplex-laboratoriediagnostik]]'' |
---- | ---- | ||
− | |||
− | Indikation | + | == Kvantitativ PCR för HSV-1 och HSV-2 vid Folkhälsomyndigheten == |
+ | |||
+ | |||
+ | |||
+ | === Indikation === | ||
+ | |||
Misstanke om infektion med Herpes simplex virus typ 1 eller 2 (HSV-1, HSV-2). Med kvantitativ polymerase chain reaction (PCR)-analys är det möjligt att detektera och kvantifiera antalet virusgenom i provmaterial vilket kan utnyttjas för att följa utvecklingen av genomantal vid behandling. | Misstanke om infektion med Herpes simplex virus typ 1 eller 2 (HSV-1, HSV-2). Med kvantitativ polymerase chain reaction (PCR)-analys är det möjligt att detektera och kvantifiera antalet virusgenom i provmaterial vilket kan utnyttjas för att följa utvecklingen av genomantal vid behandling. | ||
− | Analysprincip/teststrategi Med PCR-teknik amplifieras specifika nukleinsyrafragment (DNA-fragment) i närvaro av en fluorescerande probe. Mängden ursprungligt templat i okända prov kvantifieras genom att signalen från proben jämförs med en standardkurva generad från prov med en känd mängd templat. PCR-analysen kan dock inhiberas av olika faktorer exempelvis hämoglobin och proteinkomplex som kan finnas i de kliniska provmaterialen. På grund av detta måste alla prov extraheras innan PCR-analys. Innan extraktion tillsättes sälherpes (PhHV-1) till varje patientprov (spikning), som extraktionskontroll och inhibitionskontroll för prov i PCR-analysen. | + | |
+ | === Analysprincip/teststrategi === | ||
+ | Med PCR-teknik amplifieras specifika nukleinsyrafragment (DNA-fragment) i närvaro av en fluorescerande probe. Mängden ursprungligt templat i okända prov kvantifieras genom att signalen från proben jämförs med en standardkurva generad från prov med en känd mängd templat. PCR-analysen kan dock inhiberas av olika faktorer exempelvis hämoglobin och proteinkomplex som kan finnas i de kliniska provmaterialen. På grund av detta måste alla prov extraheras innan PCR-analys. Innan extraktion tillsättes sälherpes (PhHV-1) till varje patientprov (spikning), som extraktionskontroll och inhibitionskontroll för prov i PCR-analysen. | ||
Provmaterial | Provmaterial | ||
Rad 19: | Rad 27: | ||
HSV-2 Blåsinnehåll | HSV-2 Blåsinnehåll | ||
− | + | *Blåsinnehåll: Förvaras i rumstemperatur, kyl eller frys. | |
− | + | *Cerebrospinalvätska (CSF): volym > 200 µL. Förvara i rumstemperatur, kyl eller frys. | |
− | + | *Provtagningsmateriel | |
− | + | **Blåsinnehåll: Virocultrör eller sterilt rör med 250 µL NaCl. | |
− | + | **Cerebrospinalvätska (CSF): Sterilt rör utan tillsats. | |
− | |||
− | |||
− | |||
− | + | === Provtransport === | |
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | + | *Blåsinnehåll: Kan transporteras i rumstemperatur. | |
− | + | *Cerebrospinalvätska (CSF): Kan transporteras i rumstemperatur. | |
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | |||
− | + | === Reagenser === | |
− | |||
− | |||
− | + | *Mag Attract® DNA Mini M48 kit, Qiagen art nr: 953336 (extraktion av vätskor i BioRobot M48) | |
− | + | *QIAamp® DNA Blood Minikit, Qiagen art nr: 51106 (manuell extraktion av vätskor) | |
− | + | *Positiv extraktionskontroll för säl (PhHV-1) | |
+ | *TaqMan® Universal PCR MasterMix, ABI art nr: 4318157 | ||
+ | *MgCl<sub>2</sub>, 25 mM | ||
+ | *Probe för de olika PCR-systemen | ||
+ | *Primrar för de olika PCR-systemen | ||
+ | *Standard (extraherade Namalvaceller som innehåller integrerat EBV DNA) | ||
+ | *Positiv kontroll (acceptor) för de olika PCR-systemen | ||
+ | *Negativ kontroll (NTC) för de olika PCR-systemen | ||
− | + | === Prober och primrar === | |
− | + | *Probe för de olika PCR-systemen | |
− | + | **HSV-1: 5'FAM-CAGCACACGACTTGGCGTTCTGTGT-3'TAMRA | |
− | + | **HSV-2: 5'FAM-CAGACAAACGAACGCCGCCG-3'TAMRA | |
− | + | **Säl: 5'FAM-TTTTTATGTGTCCGCCACCATCTGGATC-3'TAMRA | |
− | |||
− | Bedömning | + | *Primrar för de olika PCR-systemen. Primrarna i HSV-1-systemet är riktade mot US5-genen. |
− | + | **HSV-1 forward: 5'-GGCCTGGCTATCCGGAGA-3' | |
− | + | **HSV-1 reverse: 5'-GCGCAGAGACATCGCGA-3' | |
− | + | ||
− | + | *Primrarna i HSV-2 systemet är riktade mot US4-genen. | |
− | + | **HSV-2 forward: 5'-AGATATCCTCTTTATCATCAGCACCA-3' | |
− | + | **HSV-2 reverse: 5'-TTGTGCTGCCAAGGCGA-3' | |
− | + | ||
− | + | *Primrarna i säl Hv-systemet är riktade mot gB-genen. | |
− | + | **Säl forward: 5'-GGGCGAATCACAGATTGAATC-3' | |
− | + | **Säl reverse: 5'-GCGGTTCCAAACGTACCAA-3' | |
− | + | ||
+ | |||
+ | === Analysprocedur === | ||
+ | |||
+ | *Sammanfattning | ||
+ | **Extraktion av DNA med valt extraktionskit. Innan extraktion tillsättes en inhibitions-kontroll till varje prov (sälherpesvirioner). Om prov spädes ut/koncentreras skall hänsyn tas till det vid beräkningen av genomkoncentrationen. Vid varje extraktion ingår även en extraktionskontroll som extraheras parallellet med övriga prov. | ||
+ | **Rena mixar bereds i templatfritt rum. | ||
+ | **I provtillsättningsrummet blandas extraherat prov med PCR-mixarna. Prover och kontroller fördelas i en 96-hålsplatta. Alla prover analyseras i duplikat för respektive PCR system. Alla prover analyseras även för sälherpes PCR systemet i en brunn (fungerar som inhibitions- och extraktionskontroll). Standard är 4 brunnar med cirka 5 EBV genom/brunn, 2 brunnar av vardera 50, 500, 5000 samt 50000 EBV genom/brunn. NTC (reagenskontroll utan templat, negativ) för respektive PCR system, i triplikat. Acceptor (positiv kontroll, cirka 20-50 genom/brunn) för aktuella PCR system, i triplikat. Slutvolymen på 25 µL i varje brunn består av 5 µL extraherat prov/kontroll och 20 µL PCR-mix. | ||
+ | **Alla brunnarna försluts. PCR-analysen sker och analyseras direkt i PCR maskinen. | ||
+ | |||
+ | *Bedömning | ||
+ | **För att ett prov skall bedömas som negativt skall båda brunnarna med aktuellt prov vara negativa. Samt att inhibitionskontrollen skall vara positiv, bör vara minst 20% positiv jämfört med extraktionskontrollens värde (sälherpes). | ||
+ | **För att ett prov skall bedömas som positivt skall båda brunnarna med aktuellt prov vara positiva. Samt att inhibitionskontrollen skall vara positiv, bör vara minst 20% positiv jämfört med extraktionskontrollens värde (sälherpes). | ||
+ | **Om endast en brunn av ett prov i duplikat blir positiv ska behörig utsvarare bedöma om provet ska svaras eller analyseras om. Om det finns tillräcklig mängd provmaterial kvar av ursprunget utföres en ny extraktion med efterföljande PCR-analys. Vid otillräcklig provvolym repeteras enbart PCR-analysen utan ny extraktion. | ||
+ | ***Om prov blir negativt i duplikat vid upprepad undersökning bedöms provet som negativt och besvaras så, om inhibitionskontrollen är OK. | ||
+ | ***Om prov blir positivt i duplikat vid upprepad undersökning bedöms provet som positivt och det erhållna genomantalet från denna analys besvaras, om inhibitionskontrollen är OK. | ||
+ | ***Om endast en brunn av ett prov i duplikat blir positiv vid upprepad undersökning och inhibitionskontrollen är OK, beräknas genomantalet i denna enstaka brunn. Därefter beräknas medelvärdet på genomantalen från de två analystillfällena. Medelvärdet besvaras. | ||
+ | **Om negativa extraktionskontroller som extraherats parallellt med patientprov blir positiva måste patientprov som är positiva extraheras om. Negativa patientprov kan besvaras. | ||
+ | **Om NTC för ett virus blir positiv måste positiva patientprov för detta virus analyseras om. Negativa patientprov kan besvaras. | ||
+ | **Om patientprovets inhibitionskontroll blir negativ måste prov om möjligt extraheras om för att sedan analyseras på nytt. | ||
+ | **Om acceptorn för ett virus blir negativ eller lägre än förväntat skall alla prov för detta virus analyseras om, ny extraktion är ej nödvändig. | ||
+ | **Om acceptorn för ett virus blir högre än förväntat skall alla positiva prov för detta virus analyseras om, ny extraktion är ej nödvändig. Negativa patientprov kan besvaras. | ||
+ | |||
+ | |||
+ | === Prestanda === | ||
− | |||
Nedre detektionsgräns för alla virus i detta dokument: 200 genom/mL. | Nedre detektionsgräns för alla virus i detta dokument: 200 genom/mL. | ||
Signifikant skillnad är > 3 gånger skillnad i koncentration jämfört med likadant provmaterial taget tidigare. | Signifikant skillnad är > 3 gånger skillnad i koncentration jämfört med likadant provmaterial taget tidigare. | ||
− | |||
− | |||
− | REFERENSER | + | === Mätintervall === |
− | HSV-1: Schloss et al. An international external quality assessment of nucleic acid amplification of herpes simplex virus. Journal of Clinical Virology 28, 2003; 175-185. | + | |
+ | Linjärt mätintervall: 1x<math>10^3</math> genom/mL till 10x<math>10^6</math> genom/mL. | ||
+ | |||
+ | == REFERENSER == | ||
+ | |||
+ | *'''HSV-1:''' Schloss et al. An international external quality assessment of nucleic acid amplification of herpes simplex virus. Journal of Clinical Virology 28, 2003; 175-185. | ||
+ | |||
+ | *'''HSV-2:''' Malin Enbom et al. Detection of EBV, but not Human Herpesvirus 8, DNA in Cervical Secretions From Swedish Women by Real-Time PCR. Sexually Transmitted Diseases 2001 May; 28(5):300-6. | ||
− | + | *'''Säl:''' G. J. J. Van Doornum et al. Diagnosing Herpesvirus Infections by Real-Time Amplification and Rapid Cilture. Journal of Clinical Microbiology Feb. 2003, p. 576-580. | |
− | + | [[Kategori:Laboratoriediagnostik-STI]] |
Nuvarande version från 14 januari 2014 kl. 15.56
Artikel publicerad år 2009
Huvudartikel:Genital herpes simplex-infektion
Sekundärartikel till:Genital herpes simplex-laboratoriediagnostik
Kvantitativ PCR för HSV-1 och HSV-2 vid Folkhälsomyndigheten[redigera]
Indikation[redigera]
Misstanke om infektion med Herpes simplex virus typ 1 eller 2 (HSV-1, HSV-2). Med kvantitativ polymerase chain reaction (PCR)-analys är det möjligt att detektera och kvantifiera antalet virusgenom i provmaterial vilket kan utnyttjas för att följa utvecklingen av genomantal vid behandling.
Analysprincip/teststrategi[redigera]
Med PCR-teknik amplifieras specifika nukleinsyrafragment (DNA-fragment) i närvaro av en fluorescerande probe. Mängden ursprungligt templat i okända prov kvantifieras genom att signalen från proben jämförs med en standardkurva generad från prov med en känd mängd templat. PCR-analysen kan dock inhiberas av olika faktorer exempelvis hämoglobin och proteinkomplex som kan finnas i de kliniska provmaterialen. På grund av detta måste alla prov extraheras innan PCR-analys. Innan extraktion tillsättes sälherpes (PhHV-1) till varje patientprov (spikning), som extraktionskontroll och inhibitionskontroll för prov i PCR-analysen.
Provmaterial Misstänkt diagnos / Symtom Virus Provmaterial CNS-infektion HSV-1 HSV-2 Cerebrospinalvätska Blåsor HSV-1 HSV-2 Blåsinnehåll
- Blåsinnehåll: Förvaras i rumstemperatur, kyl eller frys.
- Cerebrospinalvätska (CSF): volym > 200 µL. Förvara i rumstemperatur, kyl eller frys.
- Provtagningsmateriel
- Blåsinnehåll: Virocultrör eller sterilt rör med 250 µL NaCl.
- Cerebrospinalvätska (CSF): Sterilt rör utan tillsats.
Provtransport[redigera]
- Blåsinnehåll: Kan transporteras i rumstemperatur.
- Cerebrospinalvätska (CSF): Kan transporteras i rumstemperatur.
Reagenser[redigera]
- Mag Attract® DNA Mini M48 kit, Qiagen art nr: 953336 (extraktion av vätskor i BioRobot M48)
- QIAamp® DNA Blood Minikit, Qiagen art nr: 51106 (manuell extraktion av vätskor)
- Positiv extraktionskontroll för säl (PhHV-1)
- TaqMan® Universal PCR MasterMix, ABI art nr: 4318157
- MgCl2, 25 mM
- Probe för de olika PCR-systemen
- Primrar för de olika PCR-systemen
- Standard (extraherade Namalvaceller som innehåller integrerat EBV DNA)
- Positiv kontroll (acceptor) för de olika PCR-systemen
- Negativ kontroll (NTC) för de olika PCR-systemen
Prober och primrar[redigera]
- Probe för de olika PCR-systemen
- HSV-1: 5'FAM-CAGCACACGACTTGGCGTTCTGTGT-3'TAMRA
- HSV-2: 5'FAM-CAGACAAACGAACGCCGCCG-3'TAMRA
- Säl: 5'FAM-TTTTTATGTGTCCGCCACCATCTGGATC-3'TAMRA
- Primrar för de olika PCR-systemen. Primrarna i HSV-1-systemet är riktade mot US5-genen.
- HSV-1 forward: 5'-GGCCTGGCTATCCGGAGA-3'
- HSV-1 reverse: 5'-GCGCAGAGACATCGCGA-3'
- Primrarna i HSV-2 systemet är riktade mot US4-genen.
- HSV-2 forward: 5'-AGATATCCTCTTTATCATCAGCACCA-3'
- HSV-2 reverse: 5'-TTGTGCTGCCAAGGCGA-3'
- Primrarna i säl Hv-systemet är riktade mot gB-genen.
- Säl forward: 5'-GGGCGAATCACAGATTGAATC-3'
- Säl reverse: 5'-GCGGTTCCAAACGTACCAA-3'
Analysprocedur[redigera]
- Sammanfattning
- Extraktion av DNA med valt extraktionskit. Innan extraktion tillsättes en inhibitions-kontroll till varje prov (sälherpesvirioner). Om prov spädes ut/koncentreras skall hänsyn tas till det vid beräkningen av genomkoncentrationen. Vid varje extraktion ingår även en extraktionskontroll som extraheras parallellet med övriga prov.
- Rena mixar bereds i templatfritt rum.
- I provtillsättningsrummet blandas extraherat prov med PCR-mixarna. Prover och kontroller fördelas i en 96-hålsplatta. Alla prover analyseras i duplikat för respektive PCR system. Alla prover analyseras även för sälherpes PCR systemet i en brunn (fungerar som inhibitions- och extraktionskontroll). Standard är 4 brunnar med cirka 5 EBV genom/brunn, 2 brunnar av vardera 50, 500, 5000 samt 50000 EBV genom/brunn. NTC (reagenskontroll utan templat, negativ) för respektive PCR system, i triplikat. Acceptor (positiv kontroll, cirka 20-50 genom/brunn) för aktuella PCR system, i triplikat. Slutvolymen på 25 µL i varje brunn består av 5 µL extraherat prov/kontroll och 20 µL PCR-mix.
- Alla brunnarna försluts. PCR-analysen sker och analyseras direkt i PCR maskinen.
- Bedömning
- För att ett prov skall bedömas som negativt skall båda brunnarna med aktuellt prov vara negativa. Samt att inhibitionskontrollen skall vara positiv, bör vara minst 20% positiv jämfört med extraktionskontrollens värde (sälherpes).
- För att ett prov skall bedömas som positivt skall båda brunnarna med aktuellt prov vara positiva. Samt att inhibitionskontrollen skall vara positiv, bör vara minst 20% positiv jämfört med extraktionskontrollens värde (sälherpes).
- Om endast en brunn av ett prov i duplikat blir positiv ska behörig utsvarare bedöma om provet ska svaras eller analyseras om. Om det finns tillräcklig mängd provmaterial kvar av ursprunget utföres en ny extraktion med efterföljande PCR-analys. Vid otillräcklig provvolym repeteras enbart PCR-analysen utan ny extraktion.
- Om prov blir negativt i duplikat vid upprepad undersökning bedöms provet som negativt och besvaras så, om inhibitionskontrollen är OK.
- Om prov blir positivt i duplikat vid upprepad undersökning bedöms provet som positivt och det erhållna genomantalet från denna analys besvaras, om inhibitionskontrollen är OK.
- Om endast en brunn av ett prov i duplikat blir positiv vid upprepad undersökning och inhibitionskontrollen är OK, beräknas genomantalet i denna enstaka brunn. Därefter beräknas medelvärdet på genomantalen från de två analystillfällena. Medelvärdet besvaras.
- Om negativa extraktionskontroller som extraherats parallellt med patientprov blir positiva måste patientprov som är positiva extraheras om. Negativa patientprov kan besvaras.
- Om NTC för ett virus blir positiv måste positiva patientprov för detta virus analyseras om. Negativa patientprov kan besvaras.
- Om patientprovets inhibitionskontroll blir negativ måste prov om möjligt extraheras om för att sedan analyseras på nytt.
- Om acceptorn för ett virus blir negativ eller lägre än förväntat skall alla prov för detta virus analyseras om, ny extraktion är ej nödvändig.
- Om acceptorn för ett virus blir högre än förväntat skall alla positiva prov för detta virus analyseras om, ny extraktion är ej nödvändig. Negativa patientprov kan besvaras.
Prestanda[redigera]
Nedre detektionsgräns för alla virus i detta dokument: 200 genom/mL. Signifikant skillnad är > 3 gånger skillnad i koncentration jämfört med likadant provmaterial taget tidigare.
Mätintervall[redigera]
Linjärt mätintervall: 1x genom/mL till 10x genom/mL.
REFERENSER[redigera]
- HSV-1: Schloss et al. An international external quality assessment of nucleic acid amplification of herpes simplex virus. Journal of Clinical Virology 28, 2003; 175-185.
- HSV-2: Malin Enbom et al. Detection of EBV, but not Human Herpesvirus 8, DNA in Cervical Secretions From Swedish Women by Real-Time PCR. Sexually Transmitted Diseases 2001 May; 28(5):300-6.
- Säl: G. J. J. Van Doornum et al. Diagnosing Herpesvirus Infections by Real-Time Amplification and Rapid Cilture. Journal of Clinical Microbiology Feb. 2003, p. 576-580.