Skillnad mellan versioner av "Shigella-laboratoriediagnostik"

Från Referensmetodik för laboratoriediagnostik
Hoppa till navigering Hoppa till sök
(Skapade sidan med '== Laboratoriediagnostik == Följ länken för detaljerad information Odling är referensmetodik. Liksom för ''Salmonella'' finns brister i d...')
 
 
(21 mellanliggande sidversioner av 2 användare visas inte)
Rad 1: Rad 1:
== Laboratoriediagnostik ==
+
Huvudartikel: ''[[Shigella]]''
[[Shigella-laboratoriediagnostik|Följ länken för detaljerad information]]
+
 
 +
----
  
Odling är referensmetodik. Liksom för ''Salmonella'' finns brister i den bakteriologiska odlingsdiagnostiken. Detektionsgränsen är högre dels p.g.a. ''Shigella''-bakterierna växer sämre på använda substrat dels därför att anrikning inte används rutinmässigt då bra anrikningssubstrat saknas. Risken för felaktiga svar är dessutom större då ''Shigella'' egentligen är en variant av ''[[E. coli]].'' I avsaknad av tydlig standard varierar följdriktigt prestanda väsentligt mellan olika laboratorier.
 
  
 +
== Laboratoriediagnostik ==
  
 
=== Säkerhetsaspekter ===
 
=== Säkerhetsaspekter ===
 
   
 
   
Infektionsdosen för ''Shigella'' är mycket liten. Vid allt arbete med levande ''Shigella''-bakterier eller misstänkt ''Shigella'' är det viktigt att adekvat skyddsutrustning används. Att notera är att ''Sh. dysenteriae'' typ 1 sedan 1998 (AFS 1997:12) är placerad i skyddsklass 3(**) och att det krävs tillstånd av AV för att få arbeta med denna bakterie.
+
Det skall från början klargöras att infektionsdosen för ''Shigella'' är mycket liten. Vid allt arbete med levande ''Shigella''-bakterier eller misstänkt ''Shigella'' är det viktigt att adekvat skyddsutrustning används. Att notera är att ''Sh. dysenteriae'' typ 1 sedan 1998 (AFS 1997:12) är placerad i skyddsklass 3(**) och att det krävs tillstånd av AV för att få arbeta med denna bakterie.
  
 
== Referensmetodik ==
 
== Referensmetodik ==
Rad 14: Rad 15:
 
=== Referenssubstrat ===
 
=== Referenssubstrat ===
  
Nedanstående substrat utgör referenssubstrat för isolering av Shigella-bakterier från humana fecesprov (recepten återfinns i bilaga 1.1).  
+
Nedanstående substrat utgör referenssubstrat för isolering av Shigella-bakterier från humana fecesprov (recepten återfinns i [[Bilaga 1. Bakteriologiska referenssubstrat]]).  
  
Generellt rekommenderas något av de kommersiella halvfabrikat som finns på marknaden. Angående testning av loter och fortlöpande kvalitetskontroll, se [[bilaga 1]].2 - substratkontroll.  
+
Generellt rekommenderas något av de kommersiella halvfabrikat som finns på marknaden. Angående testning av loter och fortlöpande kvalitetskontroll, se [[Bilaga 2. Bakteriologiska referensmaterial]] om substratkontroll.  
  
XLD-agar [[[Bilaga 1]].1.1]: Shigella-bakterier växer inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,5-2 mm stora kolonier (framstår röda mot me¬diets grundfärg). Särskilt Shigella sonnei kan uppvisa fasva¬riation inom och mellan kolonier. Råa kolonier med ojämna kanter kan därvid förekomma.  
+
'''XLD-agar:''' ''Shigella''-bakterier växer inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,5-2 mm stora kolonier (framstår röda mot mediets grundfärg). Särskilt ''Shigella sonnei'' kan uppvisa fasvariation inom och mellan kolonier. Råa kolonier med ojämna kanter kan därvid förekomma.  
  
 
''Shigella'' species växer i allmänhet med lägre GI än ''Salmonella'', vissa stammar växer inte alls.  
 
''Shigella'' species växer i allmänhet med lägre GI än ''Salmonella'', vissa stammar växer inte alls.  
  
DC-agar modifierad enligt Hynes [''Bilaga 1''.1.2]: ''Shigella''-bakterier växer inom två dygn (ca 1/3 av stammar har inte växt ut efter ett dygn) med relativt låga GI-värden, ofta mindre än 50 %. Upp till 20 % av stammar som växer på icke inhi¬bitoriskt substrat eller på XLD uppvisar mycket dålig eller ingen växt.   
+
'''DC-agar modifierad enligt Hynes''': ''Shigella''-bakterier växer inom två dygn (ca 1/3 av stammar har inte växt ut efter ett dygn) med relativt låga GI-värden, ofta mindre än 50 %. Upp till 20 % av stammar som växer på icke inhibitoriskt substrat eller på XLD uppvisar mycket dålig eller ingen växt.   
 
 
MacConkey-agar [[[Bilaga 1]].1.15]: Shigella-bakterier växer inom ett dygn (GI överstigande 50 %) med konvexa, semi¬opaka, råa och färglösa kolonier. Inkuberas i 35 °C – 37 °C i ett dygn.
 
  
Ett bra anrikningssubstrat saknas för ''Shigella'' men Selenit-buljong kan anrika särskilt ''Sh. sonnei'' [Bilaga 1.1.4].
+
'''MacConkey-agar''': ''Shigella''-bakterier växer inom ett dygn (GI överstigande 50 %) med konvexa, semiopaka, råa och färglösa kolonier. Inkuberas i 35 °C – 37 °C i ett dygn.  
  
 +
Ett bra anrikningssubstrat saknas för ''Shigella'' men Selenit-buljong kan anrika särskilt ''Sh. sonnei'' ([[Bilaga 1. Bakteriologiska referenssubstrat]]).
  
 
=== Isolering ===
 
=== Isolering ===
Rad 33: Rad 33:
 
''Primär utodling'': Provmaterial på provtagningspinnen stryks ut på XLD-agar och DC-agar och sekundärstryk görs. Plattorna inkuberas i 35 °C - 37 °C. XLD-plattan avläses efter ett dygn samt DC-plattan efter  ett och två dygn.
 
''Primär utodling'': Provmaterial på provtagningspinnen stryks ut på XLD-agar och DC-agar och sekundärstryk görs. Plattorna inkuberas i 35 °C - 37 °C. XLD-plattan avläses efter ett dygn samt DC-plattan efter  ett och två dygn.
  
''Anrikning och sekundär utodling'': Anrikning av Sh. sonnei kan förekomma när Selenit-buljong används. (Anrikningsförfarandet ingår dock inte i referensförfarandet för Shigella-diagnostiken.) Provtagningspinnen stoppas efter den primära och sekundära utstrykningen ned i buljongen och inkuberas över natt i 35 °C - 37 °C. Med plastinös görs där¬efter utstryk på XLD-agar. Plattorna inkuberas vid 35 °C - 37 °C över natt och avläses.
+
''Anrikning och sekundär utodling'': Anrikning av ''Sh. sonnei'' kan förekomma när Selenit-buljong används. (Anrikningsförfarandet ingår dock inte i referensförfarandet för Shigella-diagnostiken.) Provtagningspinnen stoppas efter den primära och sekundära utstrykningen ned i buljongen och inkuberas över natt i 35 °C - 37 °C. Med plastinös görs därefter utstryk på XLD-agar. Plattorna inkuberas vid 35 °C - 37 °C över natt och avläses.
  
  
Rad 40: Rad 40:
 
''Presumtiv diagnos'': På XLD-agar växer Shigella-bakterier inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,2-2 mm stora kolonier. Särskilt Shigella sonnei kan uppvisa fasvariation, varvid råa kolonier med ojämna kanter kan förekomma.  
 
''Presumtiv diagnos'': På XLD-agar växer Shigella-bakterier inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,2-2 mm stora kolonier. Särskilt Shigella sonnei kan uppvisa fasvariation, varvid råa kolonier med ojämna kanter kan förekomma.  
  
På DC-agar enligt Hynes växer ''Shigella'' inom två dygn (ca 1/3 av stammarna har inte växt ut efter 1 dygn) med semiopaka, släta eller råa, färglösa (ibland rosa/röda opaka, Shigella dysenteriae typ 1 kan vara rödlila). Centralt upphöjda (”stekt ägg”) kolonier förekommer.
+
På DC-agar enligt Hynes växer ''Shigella'' inom två dygn (ca 1/3 av stammarna har inte växt ut efter 1 dygn) med semiopaka, släta eller råa, färglösa (ibland rosa/röda opaka, ''Shigella dysenteriae'' typ 1 kan vara rödlila). Centralt upphöjda (”stekt ägg”) kolonier förekommer.
  
Misstänkta kolonier plockas, rensprids på MacConkey-agar och identifieras med testbatteri enligt Tabell 10 efter växt över natten i 35 C– 37 C.
+
Misstänkta kolonier plockas, rensprids på MacConkey-agar och identifieras med testbatteri enligt Tabell 10 efter växt över natten i 35°C - 37°C. Testbatteriet definieras i artikeln [[Bilaga 1c. Biokemiska referenssubstrat för testbatteri vid identifiering av bakteriella tarmpatogener]].
  
Observera att det är olämpligt att använda ett mer selektivt substrat då växt av eventuella förorenande koliforma bakterier då kan undertryckas. Testbatteriet inkuberas över natten i 35 °C - 37 °C. Resultatet avläses och tolkas enligt tabell 10.
+
Testbatteriet inkuberas över natten i 35°C - 37°C. Resultatet avläses och tolkas enligt tabell 10.
  
Tabell 10. Biokemiska referenssubstrat och förväntade resultat efter inkubering i 35-37 C vid identifie¬ring av Shigella-bakterier.
+
=== Tabell 10. Biokemiska referenssubstrat och förväntade resultat efter inkubering i 35-37 °C  vid identifiering av ''Shigella''-bakterier ===
¬_____________________________________________________________
 
  
Mannit1) LD2) OD3) H2S2) ONPG Indol4) Urea2)
+
{|
 +
|-
 +
|width="100"|'''Bakterie
 +
|width="100"|'''Mannit 1)
 +
|width="100"|'''LD 2)
 +
|width="100"|'''OD 3)
 +
|width="100"|'''H<sub>2</sub>S 2)
 +
|width="100"|'''ONPG
 +
|width="100"|'''Indol 4)
 +
|width="100"|'''Urea 2)
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|'' Shigella sonnei''  || +/0 gas|| -|| + ||- ||+ ||- || -
 +
|-bgcolor="#EBC2AF"
 +
|'' Shigella boydii'' || +/0 gas|| - || - ||- ||+ ||-|| -
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|'' Shigella boydii/flexneri''|| +/0 gas|| - || - ||- || -||+ || -
 +
|-bgcolor="#EBC2AF"
 +
|'' Shigella boydii/flexneri'', variant  || +/0 gas|| -|| - || - ||- ||- || -
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|'' Shigella dysenteriae''|| -|| -|| -||- ||+ ||-|| -
 +
|-bgcolor="#EBC2AF"
 +
|''Shigella dysenteriae'', variant 1|| -|| - || - ||-||- ||+|| -
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|''Shigella dysenteriae'', variant 2 || -|| - || - ||- || -||- || -
 +
|}
 +
 
 +
*1) Mannit utan gas i Durhamrör. Enstaka stammar av ''Sh. boydii'' och ''Sh. flexneri'' kan jäsa mannit under gasutveckling. Enstaka stammar av ''Sh. flexneri'', ''Sh. boydii'' och ''Sh. sonnei'' är negativa i mannit.
 +
*2) Positiv reaktion i endera LD, H<sub>2</sub>S, urea eller oxidas utesluter genus ''Shigella''. 
 +
*3) Enstaka isolat av ''Sh. boydii'' och ''Sh. flexneri'' kan vara OD-positiva. Enstaka isolat av ''Sh. sonnei'' kan vara OD-negativa.
 +
*4) Positiv reaktion i både ONPG och indol utesluter i praktiken genus ''Shigella''. Enstaka isolat av ''Sh. sonnei'' kan vara ONPG-negativa.
  
Sh. sonnei +/0 gas        -        +   -     +          -              -             
 
Sh. boydii +/0 gas        -          -   -     +   -              -             
 
Sh. boydii/flexneri +/0 gas        -          -   -     -   +              -
 
          ”  +/0 gas        -          -    -     -    -              -                       
 
Sh. dysenteriae     -      -          -    -     +    -              -
 
        ”      -   -          -   -        -    +              -                     
 
        ”      -      -     -   -       -      -      -
 
_____________________________________________________________
 
1) Mannit utan gas i Durhamrör. Enstaka stammar av Sh. boydii och Sh. flexneri kan jäsa mannit under gasutveckling. Enstaka stammar av Sh. flexneri, Sh. boydii och Sh. sonnei är negativa i mannit.
 
2) Positiv reaktion i endera LD, H2S, urea eller oxidas utesluter genus Shigella. 
 
3) Enstaka isolat av Sh. boydii och Sh. flexneri kan vara OD-positiva. Enstaka isolat av Sh. sonnei kan vara OD-negativa.
 
4) Positiv reaktion i både ONPG och indol utesluter i praktiken genus Shigella. Enstaka isolat av Sh. sonnei kan vara ONPG-negativa.
 
  
  
Rad 69: Rad 85:
 
Ett isolat som avviker i mer än en reaktion (enligt fotnot 1-4 tabell 10) kan i praktiken uteslutas från genus ''Shigella''.
 
Ett isolat som avviker i mer än en reaktion (enligt fotnot 1-4 tabell 10) kan i praktiken uteslutas från genus ''Shigella''.
  
Isolat som misstänks vara ''Shigella'' karakteriseras ytterligare med ett kommersiellt testsystem (t.ex. API 20E). Kvarstår därefter misstanke om ''Shigella'', sänds isolatet till SMI för identifiering och typning.
+
Isolat som misstänks vara ''Shigella'' karakteriseras ytterligare med ett kommersiellt testsystem (t.ex. API 20E). Kvarstår därefter misstanke om ''Shigella'', sänds isolatet till Folkhälsomyndigheten för identifiering och typning.
+
 
''Slutlig diagnos'': För identifiering av ''Shigella'' krävs förutom testerna i den pri-mära identifieringen att stammen är negativ i rörlighet och VP. Vidare krävs att bakterier avdödade genom kokning i 2 timmar agglutinerar i monospecifikt antiserum. Anledningen till att agglutinationen skall göras på kokta bakterier är förekomst av ett antal korsreaktioner, med främst'' [[E. coli]]'' där olika proteinantigener är ansvariga. Dessa förstörs genom kokning.   
+
''Slutlig diagnos'': För identifiering av ''Shigella'' krävs förutom testerna i den primära identifieringen att stammen är negativ i rörlighet och VP. Vidare krävs att bakterier avdödade genom kokning i 2 timmar agglutinerar i monospecifikt antiserum. Anledningen till att agglutinationen skall göras på kokta bakterier är förekomst av ett antal korsreaktioner, med främst'' [[E. coli]]'' där olika proteinantigener är ansvariga. Dessa förstörs genom kokning.   
  
 
Vid ett konsensusmöte om fecesdiagnostik i april år 2002 beslutades att alla invasiva bakterier i gråzoonen mellan ''Shigella'' och EIEC, d.v.s jäser som ''Shigella'', har virulensplasmiden men som inte agglutinerar i specifikt antiserum efter kokning, skall betraktas som EIEC och inte som ''Shigella''.  
 
Vid ett konsensusmöte om fecesdiagnostik i april år 2002 beslutades att alla invasiva bakterier i gråzoonen mellan ''Shigella'' och EIEC, d.v.s jäser som ''Shigella'', har virulensplasmiden men som inte agglutinerar i specifikt antiserum efter kokning, skall betraktas som EIEC och inte som ''Shigella''.  
  
Det är lämpligt att SMI t.v. handhar den slutliga identifieringen av ''Shigella'' då de samlade erfarenheterna vid SMI, i samarbete med internationella referens-laboratorier, kan komma att påverka framtida klassificering av ''Shigella'', och att stammarna då finns tillgängliga för typning.
+
Det är lämpligt att Folkhälsomyndigheten t.v. handhar den slutliga identifieringen av ''Shigella'' då de samlade erfarenheterna vid Folkhälsomyndigheten, i samarbete med internationella referenslaboratorier, kan komma att påverka framtida klassificering av ''Shigella'', och att stammarna då finns tillgängliga för typning.
 
 
  
 
=== Avvikelser från referensmetodiken ===
 
=== Avvikelser från referensmetodiken ===
Rad 85: Rad 100:
 
== Alternativ diagnostik ==
 
== Alternativ diagnostik ==
  
Shigella-liknande bakterier, här definierade som både ''Shigella'' och EIEC, kan med god säkerhet och med stor känslighet identifieras genom påvisande av virulens¬plasmiden i ett fecesprov. Vid SMI görs detta genom att utodla feces på en MacConkey-platta och därefter analysera utväxta kolonier med PCR.
+
''Shigella''-liknande bakterier, här definierade som både ''Shigella'' och EIEC, kan med god säkerhet och med stor känslighet identifieras genom påvisande av virulensplasmiden i ett fecesprov. Vid Folkhälsomyndigheten görs detta genom att utodla feces på en MacConkey-platta och därefter analysera utväxta kolonier med PCR.
  
  
Rad 95: Rad 110:
 
=== Epidemiologisk typning ===
 
=== Epidemiologisk typning ===
  
SMI utför rutinmässigt en begränsad serologisk typning av Shigella. Detta är särskilt viktigt vid misstanke om utbrott och inhemsk smitta. Vid behov kompletteras denna genom typning med bl.a. DNA-baserad metodik.
+
Folkhälsomyndigheten utför rutinmässigt en begränsad serologisk typning av ''Shigella''. Detta är särskilt viktigt vid misstanke om utbrott och inhemsk smitta. Vid behov kompletteras denna genom typning med bl.a. DNA-baserad metodik.
 
 
  
 
=== Kvalitetskontroll och metodkalibrering ===
 
=== Kvalitetskontroll och metodkalibrering ===
Utförs efter de principer som anges under kvalitetssäkring i den allmänna delen  
+
Utförs efter de principer som anges under kvalitetssäkring i den allmänna delen
 
 
 
 
=== Referensstammar ===
 
  
I tabell 11 listas referensstammar av ''Shigella''
+
== Referensstammar ==
  
Tabell 11. Shigella referensstammar vid  kontroll av substrat och övriga diag-nostiska pro¬ce¬durer.
+
I tabell 11 listas referensstammar av ''Shigella''
                                                                                                      Växt på 1)
 
Bakterie    CCUG ATCC Karakteristika XLD DC-Hynes
 
  
Shigella flexneri     21 251 indolpositiv >75       >75
+
===Tabell 11. ''Shigella'' referensstammar vid  kontroll av substrat och övriga diagnostiska procedurer.===
Shigella flexneri 32 079 12 022   normalvariant >75       >50
+
{|
Shigella sonnei 32 351 25 931 normalvariant <25       <25
+
|-
Shigella sonnei   9567   9774     normalvariant <25       <10
+
|width="100"|'''Bakterie
 +
|width="100"|'''CCUG
 +
|width="100"|'''ATCC
 +
|width="100"|'''Karakteristika
 +
|width="100"|'''Växt (1) på XLD
 +
|width="100"|'''Växt (1) på DC-Hynes
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|'' Shigella flexneri''  || 21 251 || -|| indolpositiv ||>75 || >75  
 +
|-bgcolor="#EBC2AF"
 +
|'' Shigella flexneri'' || 32 079|| 12 022 || normalvariant ||>75 ||>50  
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|'' Shigella sonnei''|| 32 351|| 25 931 || normalvariant || <25 || <25  
 +
|-bgcolor="#EBC2AF"
 +
|'' Shigella sonnei''  || 9567|| 9774|| normalvariant || <25 ||<10  
 +
|-bgcolor="#CCCCFF"
 +
|}                                                                                                      Växt på 1)
 
1) Avser relative growth index (uttryckt i procent), d.v.s antal CFU på testagar x100/antal CFU på kontrollagar (CLED eller MacConkey), se också avsnitt substratprövning, bilaga 1.2.
 
1) Avser relative growth index (uttryckt i procent), d.v.s antal CFU på testagar x100/antal CFU på kontrollagar (CLED eller MacConkey), se också avsnitt substratprövning, bilaga 1.2.
  
 +
=== Referenssera ===
 +
*''Sh. dysenteriae'' 1-13 (Reagensia AB)
 +
*''Sh. flexneri'' (Reagensia AB)
 +
*''Sh. flexneri'' monoklonaler (Reagensia AB)
 +
*''Sh. boydii'' 1-18 (Reagensia AB)
 +
*''Sh. sonnei'' SoR (Reagensia AB)
  
*Referenssera
+
== Svarsrutiner==
**''Sh. dysenteriae'' 1-13 (Reagensia AB)
 
**''Sh. flexneri'' (Reagensia AB)
 
**''Sh. flexneri'' monoklonaler (Reagensia AB)
 
**''Sh. boydii'' 1-18 (Reagensia AB)
 
**''Sh. sonnei'' SoR (Reagensia AB)
 
  
 +
Svar formuleras enligt laboratoriets rutiner. Vid stark misstanke om ''Shigella'' kan ett preliminärsvar om växt av misstänkt ''Shigella'' anges, samt att isolatet sänts till Folkhälsomyndigheten för verifiering. Efter erhållet svar meddelas detta till inremitterande med angivande av species samt i förekommande fall serotyp. Resistensmönster mot antibiotika skall bifogas preliminärsvaret.
  
=== Svarsrutiner ===
 
  
Svar formuleras enligt laboratoriets rutiner. Vid stark misstanke om ''Shigella'' kan ett preliminärsvar om växt av misstänkt ''Shigella'' anges, samt att isolatet sänts till SMI för verifiering. Efter erhållet svar meddelas detta till inremitterande med angivande av species samt i förekommande fall serotyp. Resistensmönster mot antibiotika skall bifogas preliminärsvaret.
+
[[Kategori:Laboratoriediagnostik-Infektioner i mage och tarm]]

Nuvarande version från 13 januari 2014 kl. 10.53

Huvudartikel: Shigella



Laboratoriediagnostik[redigera]

Säkerhetsaspekter[redigera]

Det skall från början klargöras att infektionsdosen för Shigella är mycket liten. Vid allt arbete med levande Shigella-bakterier eller misstänkt Shigella är det viktigt att adekvat skyddsutrustning används. Att notera är att Sh. dysenteriae typ 1 sedan 1998 (AFS 1997:12) är placerad i skyddsklass 3(**) och att det krävs tillstånd av AV för att få arbeta med denna bakterie.

Referensmetodik[redigera]

Referenssubstrat[redigera]

Nedanstående substrat utgör referenssubstrat för isolering av Shigella-bakterier från humana fecesprov (recepten återfinns i Bilaga 1. Bakteriologiska referenssubstrat).

Generellt rekommenderas något av de kommersiella halvfabrikat som finns på marknaden. Angående testning av loter och fortlöpande kvalitetskontroll, se Bilaga 2. Bakteriologiska referensmaterial om substratkontroll.

XLD-agar: Shigella-bakterier växer inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,5-2 mm stora kolonier (framstår röda mot mediets grundfärg). Särskilt Shigella sonnei kan uppvisa fasvariation inom och mellan kolonier. Råa kolonier med ojämna kanter kan därvid förekomma.

Shigella species växer i allmänhet med lägre GI än Salmonella, vissa stammar växer inte alls.

DC-agar modifierad enligt Hynes: Shigella-bakterier växer inom två dygn (ca 1/3 av stammar har inte växt ut efter ett dygn) med relativt låga GI-värden, ofta mindre än 50 %. Upp till 20 % av stammar som växer på icke inhibitoriskt substrat eller på XLD uppvisar mycket dålig eller ingen växt.

MacConkey-agar: Shigella-bakterier växer inom ett dygn (GI överstigande 50 %) med konvexa, semiopaka, råa och färglösa kolonier. Inkuberas i 35 °C – 37 °C i ett dygn.

Ett bra anrikningssubstrat saknas för Shigella men Selenit-buljong kan anrika särskilt Sh. sonnei (Bilaga 1. Bakteriologiska referenssubstrat).

Isolering[redigera]

Primär utodling: Provmaterial på provtagningspinnen stryks ut på XLD-agar och DC-agar och sekundärstryk görs. Plattorna inkuberas i 35 °C - 37 °C. XLD-plattan avläses efter ett dygn samt DC-plattan efter ett och två dygn.

Anrikning och sekundär utodling: Anrikning av Sh. sonnei kan förekomma när Selenit-buljong används. (Anrikningsförfarandet ingår dock inte i referensförfarandet för Shigella-diagnostiken.) Provtagningspinnen stoppas efter den primära och sekundära utstrykningen ned i buljongen och inkuberas över natt i 35 °C - 37 °C. Med plastinös görs därefter utstryk på XLD-agar. Plattorna inkuberas vid 35 °C - 37 °C över natt och avläses.


Identifiering och minimikriterier[redigera]

Presumtiv diagnos: På XLD-agar växer Shigella-bakterier inom ett dygn med semiopaka, släta och blanka färglösa 0,2-2 mm stora kolonier. Särskilt Shigella sonnei kan uppvisa fasvariation, varvid råa kolonier med ojämna kanter kan förekomma.

På DC-agar enligt Hynes växer Shigella inom två dygn (ca 1/3 av stammarna har inte växt ut efter 1 dygn) med semiopaka, släta eller råa, färglösa (ibland rosa/röda opaka, Shigella dysenteriae typ 1 kan vara rödlila). Centralt upphöjda (”stekt ägg”) kolonier förekommer.

Misstänkta kolonier plockas, rensprids på MacConkey-agar och identifieras med testbatteri enligt Tabell 10 efter växt över natten i 35°C - 37°C. Testbatteriet definieras i artikeln Bilaga 1c. Biokemiska referenssubstrat för testbatteri vid identifiering av bakteriella tarmpatogener.

Testbatteriet inkuberas över natten i 35°C - 37°C. Resultatet avläses och tolkas enligt tabell 10.

Tabell 10. Biokemiska referenssubstrat och förväntade resultat efter inkubering i 35-37 °C vid identifiering av Shigella-bakterier[redigera]

Bakterie Mannit 1) LD 2) OD 3) H2S 2) ONPG Indol 4) Urea 2)
Shigella sonnei +/0 gas - + - + - -
Shigella boydii +/0 gas - - - + - -
Shigella boydii/flexneri +/0 gas - - - - + -
Shigella boydii/flexneri, variant +/0 gas - - - - - -
Shigella dysenteriae - - - - + - -
Shigella dysenteriae, variant 1 - - - - - + -
Shigella dysenteriae, variant 2 - - - - - - -
  • 1) Mannit utan gas i Durhamrör. Enstaka stammar av Sh. boydii och Sh. flexneri kan jäsa mannit under gasutveckling. Enstaka stammar av Sh. flexneri, Sh. boydii och Sh. sonnei är negativa i mannit.
  • 2) Positiv reaktion i endera LD, H2S, urea eller oxidas utesluter genus Shigella.
  • 3) Enstaka isolat av Sh. boydii och Sh. flexneri kan vara OD-positiva. Enstaka isolat av Sh. sonnei kan vara OD-negativa.
  • 4) Positiv reaktion i både ONPG och indol utesluter i praktiken genus Shigella. Enstaka isolat av Sh. sonnei kan vara ONPG-negativa.


Bakterier som på omstrykningen har en för Shigella typisk kolonimorfologi och som jäser enligt något av utfallen i tabell 10 misstänks vara Shigella. Jäsning av glukos är ett minimikriterium för presumtiv identifiering av Shigella. Jäsning av glukos kan normalt avläsas i LD-röret genom färgomslag till gult.

Ett isolat som avviker i mer än en reaktion (enligt fotnot 1-4 tabell 10) kan i praktiken uteslutas från genus Shigella.

Isolat som misstänks vara Shigella karakteriseras ytterligare med ett kommersiellt testsystem (t.ex. API 20E). Kvarstår därefter misstanke om Shigella, sänds isolatet till Folkhälsomyndigheten för identifiering och typning.

Slutlig diagnos: För identifiering av Shigella krävs förutom testerna i den primära identifieringen att stammen är negativ i rörlighet och VP. Vidare krävs att bakterier avdödade genom kokning i 2 timmar agglutinerar i monospecifikt antiserum. Anledningen till att agglutinationen skall göras på kokta bakterier är förekomst av ett antal korsreaktioner, med främst E. coli där olika proteinantigener är ansvariga. Dessa förstörs genom kokning.

Vid ett konsensusmöte om fecesdiagnostik i april år 2002 beslutades att alla invasiva bakterier i gråzoonen mellan Shigella och EIEC, d.v.s jäser som Shigella, har virulensplasmiden men som inte agglutinerar i specifikt antiserum efter kokning, skall betraktas som EIEC och inte som Shigella.

Det är lämpligt att Folkhälsomyndigheten t.v. handhar den slutliga identifieringen av Shigella då de samlade erfarenheterna vid Folkhälsomyndigheten, i samarbete med internationella referenslaboratorier, kan komma att påverka framtida klassificering av Shigella, och att stammarna då finns tillgängliga för typning.

Avvikelser från referensmetodiken[redigera]

Referensmetodiken anger en miniminivå för diagnostiken. Avvikelser från referensmetodiken måste valideras mot denna och dokumenteras.


Alternativ diagnostik[redigera]

Shigella-liknande bakterier, här definierade som både Shigella och EIEC, kan med god säkerhet och med stor känslighet identifieras genom påvisande av virulensplasmiden i ett fecesprov. Vid Folkhälsomyndigheten görs detta genom att utodla feces på en MacConkey-platta och därefter analysera utväxta kolonier med PCR.


Resistensbestämning och resistensutveckling[redigera]

Även om flertalet Shigella-infektioner läker ut spontant antibiotikabehandlas många patienter med god effekt. Behandling förkortar också smittsamhetsperioden. Utveckling av multiresistens har noterats främst i Sydostasien. Shigella-bakterier skall därför resistensbestämmas. Rekommendationen följer aktuell metodik utarbetad av RAF.


Epidemiologisk typning[redigera]

Folkhälsomyndigheten utför rutinmässigt en begränsad serologisk typning av Shigella. Detta är särskilt viktigt vid misstanke om utbrott och inhemsk smitta. Vid behov kompletteras denna genom typning med bl.a. DNA-baserad metodik.

Kvalitetskontroll och metodkalibrering[redigera]

Utförs efter de principer som anges under kvalitetssäkring i den allmänna delen

Referensstammar[redigera]

I tabell 11 listas referensstammar av Shigella

Tabell 11. Shigella referensstammar vid kontroll av substrat och övriga diagnostiska procedurer.[redigera]

Bakterie CCUG ATCC Karakteristika Växt (1) på XLD Växt (1) på DC-Hynes
Shigella flexneri 21 251 - indolpositiv >75 >75
Shigella flexneri 32 079 12 022 normalvariant >75 >50
Shigella sonnei 32 351 25 931 normalvariant <25 <25
Shigella sonnei 9567 9774 normalvariant <25 <10

Växt på 1)

1) Avser relative growth index (uttryckt i procent), d.v.s antal CFU på testagar x100/antal CFU på kontrollagar (CLED eller MacConkey), se också avsnitt substratprövning, bilaga 1.2.

Referenssera[redigera]

  • Sh. dysenteriae 1-13 (Reagensia AB)
  • Sh. flexneri (Reagensia AB)
  • Sh. flexneri monoklonaler (Reagensia AB)
  • Sh. boydii 1-18 (Reagensia AB)
  • Sh. sonnei SoR (Reagensia AB)

Svarsrutiner[redigera]

Svar formuleras enligt laboratoriets rutiner. Vid stark misstanke om Shigella kan ett preliminärsvar om växt av misstänkt Shigella anges, samt att isolatet sänts till Folkhälsomyndigheten för verifiering. Efter erhållet svar meddelas detta till inremitterande med angivande av species samt i förekommande fall serotyp. Resistensmönster mot antibiotika skall bifogas preliminärsvaret.